吉林细胞疗法产品支原体检测方法学验证

为解决传统方法的局限，各国药典纷纷认可支原体核酸检测（NAT）法作为替代方案。EP 2.6.7、USP <77>、JP <G3-14-170>均明确了 NAT 法的应用标准，《中国药典》3301 也规定 “可采用经国家药品检定机构认可的其他方法”，并明确 NAT 法替代培养法时检测限需达 10 CFU/mL，替代指示细胞培养法时需达 100 CFU/mL。NAT 法凭借检测速度快、特异性强的优势，成为新型生物制品支原体检测的理想选择，且法规明确只要通过相关验证，即可正式替代传统方法，为企业提供了合规且高效的检测路径。

全球主流药典均认可 NAT 法作为支原体检测的替代方法，但明确要求需经过充分验证并证明与传统方法的可比性。欧洲药典（EP）2.6.7 规定 NAT 法可作为替代方法，需开展供试品抑制性验证；美国药典（USP）63&77 要求替代方法需与培养法、指示细胞培养法均具备可比性，且 USP<77> 专门针对支原体 NAT 法的验证与检测制定了规范；日本药典（JP）G3-14-170 允许经适当验证后的 NAT 法替代传统方法；中国药典 3301 及相关指导原则明确，CAR-T、干细胞等新型产品可采用 NAT 法，但需充分验证其最低检出限不低于药典方法，早期需与药典方法并行使用。此外，各国法规均强调，NAT 法的选择、开发与应用需基于科学依据，充分考虑培养基、生产工艺、潜在污染菌株等因素。

检测限验证是支原体 NAT 方法（核酸扩增法）合规性的关键要求，法规明确界定需为每种目标支原体确定阳性检测临界值。验证流程需满足严格的实验设计：每种支原体至少进行三次单独的 10 倍梯度稀释，每次稀释后需制备平行管检测，再确保各稀释浓度获得 24 个检测结果。阳性临界值的判定标准为，该浓度下至少 95% 的试验运行能得到阳性结果，即 24 个样品中需至少出现 23 个有效阳性结果。这一严谨设计旨在确保 NAT 检测方法在实际应用中，能够稳定检出低浓度支原体污染，避免因检测灵敏度不足导致的安全风险，为生物制品质量控制提供可靠保障。

外源因子全自动核酸检测分析系统系统在数据追溯与合规管理方面进行了针对性设计，完美适配生物药行业的严格监管要求。系统内置三级权限管理机制，可对操作人员、检测项目、数据访问进行准确管控，同时具备完善的日志审计追踪功能，详细记录检测全流程的关键信息，确保数据可追溯、可核查，完全符合 21CFR Part11 法规要求。数据传输方面，系统支持与 LIMS 实验室信息管理系统无缝对接，实现检测数据的自动同步与集中管理，同时配备 USB 接口，可直接连接打印机打印实验结果，满足企业纸质记录存档需求。这些功能让支原体检测的每一个环节都处于合规管控之下，为企业应对监管检查、保障数据真实性提供了有力支持。

湖州申科外源因子全自动核酸检测分析系统打造了 “样本进、结果出” 的高效检测流程，彻底简化支原体检测操作。检测只需一步式加样，最大支持 1mL 样本直接上样，无需复杂前处理，加样后系统自动完成核酸提取与检测，全程 3 小时内即可获取结果，其中样本准备时间不足 5 分钟，检测流程只需 2.5 小时。相比传统方法水浴消化、磁珠分离、洗脱等繁琐步骤，该系统操作极大简化，且配备 UI 触屏控制系统，内置标准化程序，支持扫码启动检测，无需专业 qPCR 操作培训，普通人员经简单指导即可上手。系统采用 4 通道单独运行设计，可同步开展不同样本检测，仪器还支持叠加延展通道，进一步提升检测产能，适配生物药多批次检测需求。

菌株质量是支原体检测 NAT 方法验证合规的关键，GC/CFU 比（基因组拷贝数与菌落形成单位比值）是关键控制指标。支原体存在聚集特性，单一 CFU 可能对应多个菌体，且 DNA 复制与细胞分裂不同步，部分菌体无法形成菌落但会释放 DNA，导致 GC/CFU 比波动大（研究报道 0.1 CFU 对应 30-500 个基因组拷贝）。若使用高 GC/CFU 比菌株，会高估检测限、导致方法灵敏度不足，因此法规明确要求菌株 GC/CFU 比＜10。2024 年 EDQM 36.1 草案规定参考品 GC/CFU 比应小于 10，USP 77 征求意见稿要求表征菌株 GC/CFU 比、建立菌株库 CFU 与核酸拷贝数关系，JP G3-14-170 也对菌株质量提出明确要求，凸显合规菌株选择的重要性。