陕西免疫细胞产品支原体检测试剂盒

检测限验证是支原体 NAT 方法（核酸扩增法）合规性的关键要求，法规明确界定需为每种目标支原体确定阳性检测临界值。验证流程需满足严格的实验设计：每种支原体至少进行三次单独的 10 倍梯度稀释，每次稀释后需制备平行管检测，再确保各稀释浓度获得 24 个检测结果。阳性临界值的判定标准为，该浓度下至少 95% 的试验运行能得到阳性结果，即 24 个样品中需至少出现 23 个有效阳性结果。这一严谨设计旨在确保 NAT 检测方法在实际应用中，能够稳定检出低浓度支原体污染，避免因检测灵敏度不足导致的安全风险，为生物制品质量控制提供可靠保障。

2023 年美国国立卫生研究院（NIH）的对比研究得出一个结论是并非所有商业化支原体检测试剂盒都能满足替代传统方法的要求，研究对市面上 5 款主流试剂盒（ATCC、梅里埃、赛默飞、罗氏、MB）进行测试，发现不同试剂盒对不同支原体菌株的检测灵敏度差异明显，部分产品无法达到宣称的≤10 CFU/mL 检测限（符合欧、日药典替代培养法的要求）。例如，ATCC 试剂盒对莱氏无胆甾原体、精氨酸支原体的检测限只为 100 CFU/mL，MB 试剂盒对硬蜱螺原体无法检出（>1000 CFU/mL）。这一现象表明，试剂盒的检测性能与支原体菌株特性密切相关，因此企业需根据待测样品的原辅料来源和检测目的，对试剂盒进行严格的性能验证，避免因检测限不达标导致质量风险。

湖州申科生物构建了完整的支原体检测解决方案，包含支原体 DNA 提取纯化试剂盒与检测试剂盒两大产品。提取纯化试剂盒采用磁珠法技术，具有回收率高、样品兼容性强的优势，配合湖州申科 rHCDpurify^®前处理系统可实现自动化提取操作，大幅提升检测效率并减少人为误差。检测试剂盒采用 PCR - 荧光探针法，覆盖近200种支原体 DNA 序列，检测专一性强，且对不同品牌 PCR 仪器具有良好的适用性，性能稳定可靠。产品规格明确，提取试剂盒可处理 50 个样品，检测试剂盒可完成 50 次反应，整套体系从样品前处理到定性检测形成闭环，满足生物制品生产各环节的支原体筛查需求。

湖州申科的支原体培养法样品检测流程严格遵循 USP 标准，步骤规范且逻辑严谨。接种环节：每 100mL 液体培养基接种 10mL 供试品，每类固体培养基接种 0.2mL 供试品；培养条件：置于 36±1℃、5-10% CO₂的湿润环境中培养 28 天。继代培养需在特定时间点开展：接种后第 2-4 天、第 6-8 天、第 13-15 天、第 19-21 天，每次从每种液体培养基中吸取至少 0.2mL，接种至对应固体培养基继续培养不少于 14 天，其中第 20-21 天的继代培养需持续 7 天。观察频率为每 2-3 天一次，若液体培养物出现颜色变化，需立即进行继代培养，再通过与阴阳性对照培养基的对比，完成结果判定，确保检测无遗漏、无偏差。

全球主流药典对支原体 NAT 检测的标准菌株选择形成了明确共识，中国、欧洲、美国、日本四国药典一致推荐优先使用猪鼻支原体、口腔支原体、肺炎支原体三种菌株，用于 NAT 方法检测限的验证，这一选择基于支原体的污染发生频率与进化关系。不同地区法规的验证范围略有差异：EP、USP、ChP 要求覆盖特异性、检测限、耐受性，WHO 还需包含半定量与定性实验；部分地区如欧洲药典额外纳入莱氏无胆甾原体、滑液支原体等菌株，针对昆虫和植物来源物料生产场景则需关注螺原体等特殊菌株。合规的标准菌株是 NAT 检测方法验证的前提，其溯源性与授权资质直接影响检测结果的认可度。

菌株质量是支原体检测 NAT 方法验证合规的关键，GC/CFU 比（基因组拷贝数与菌落形成单位比值）是关键控制指标。支原体存在聚集特性，单一 CFU 可能对应多个菌体，且 DNA 复制与细胞分裂不同步，部分菌体无法形成菌落但会释放 DNA，导致 GC/CFU 比波动大（研究报道 0.1 CFU 对应 30-500 个基因组拷贝）。若使用高 GC/CFU 比菌株，会高估检测限、导致方法灵敏度不足，因此法规明确要求菌株 GC/CFU 比＜10。2024 年 EDQM 36.1 草案规定参考品 GC/CFU 比应小于 10，USP 77 征求意见稿要求表征菌株 GC/CFU 比、建立菌株库 CFU 与核酸拷贝数关系，JP G3-14-170 也对菌株质量提出明确要求，凸显合规菌株选择的重要性。