通过空间代谢组学检测到正常肾脏与MYC诱导的**之间的GPs丰度（m/z：700–1000），发现两组存在***差异，尤其是m/z在865的***增加。酰基侧链较短（18个碳或更少）的PG在MYC***的前15天呈现增加趋势，然后开始减少，但酰基侧链较长的PG含量持续增加（图 5）。MYC失活后，这些差异在很大程度上是可逆的。通过体外实验证明，MYC的诱导和MYC失活能够增加和降低了PG合成基因的mRNA（图6C）。并且MYC活化还上调了FA延长酶ELOVL2和ELOVL6的mRNA表达丰度（图6D）。结果显示，MYC参与调节FA生成和相关基因的表达。专业空间代谢组学 技术团队,欢迎咨询。甘肃空间代谢组学和心脏
作者使用NMR对C原子进行示踪实验，发现MYC驱动葡萄糖和谷氨酰胺的C参与脂肪生成（图3）。采用空间代谢组学检测小鼠模型以及人BCL细胞中的FA，发现MYC**中不饱和脂肪酸（FA（18：1））的丰度增加。进一步发现13C-油酸酯在MYC诱导的BCL细胞未发生代谢，而13C-葡萄糖增加了不饱和FA中的标记碳。当MYC失活时，细胞中3H标记的棕榈酸酯氧化速率明显变高。MYC-ON和MYC-OFF的BCL细胞中的油酸酯均未被氧化。因此，MYC可能在抑制FA氧化的同时上调FA的合成。安徽空间代谢组学英文空间代谢组突破传统代谢组研究损失空间信息的瓶颈。
本研究应用空间代谢组学能够客观地识别食管腺*。EA组磷脂富含长链、多不饱和的PGs。并且，遗传学研究表明，这一机制与脂肪酸从头合成有关。这些结果表明，空间代谢组学可以区分恶性食管中的组织类型。在临床应用包括客观诊断和术中切缘评估具有潜在价值。在获得AFADESI平台原创团队全力支持下，截止2021年9月，鹿明生物已经完成共计近千例样本经验，包括心脏、脑、**、肠道、肝脏、肾脏、皮肤等十几种组织样本空间代谢组学检测及分析。
空间代谢组学：在大鼠脑绘制特定区域分布的极性代谢物图谱使用AFADESI-MSI在正离子和负离子模式下分别获得298个和372个微区轮廓清晰的代谢物离子图像。使用精确分子量并结合同位素丰度，通过人类代谢组数据库（HMDB）对离子图像进行识别，鉴定出多种内源极性代谢物，包括氨基酸、核苷酸或核苷、碳水化合物、脂肪酸和神经递质等。***系统（CNS）的特定功能和特定解剖区域相关。例如，乙酰胆碱在大脑皮层中高度表达；γ-氨基丁酸是一种抑制性神经递质，其在大脑皮层的信号强度较低，在中脑、嗅球和下丘脑中的浓度较高。欧易生物空间代谢组学。
质谱成像（Mass Spectrometry Imaging, MSI）作为一种新型的分子影像技术，能够直接从生物组织中获得大量已知或未知的内源性代谢物和外源***物等分子的结构、含量和空间分布信息。相对于其他成像方法（如荧光成像、放射性标记成像等），该技术无需化学或放射性标记、不需复杂样品前处理，具有高特异性、高通量和空间信息保留的突出优势。质谱成像技术可以实现生物组织中上千代谢物的定性、定量和定位分析，结合生物信息学分析，发展为空间代谢组学方法，可从生物组织原位发现差异代谢物，并识别其生物学功能。空间代谢组技术特点。福建空间代谢组学商业应用
定量和定位分析，结合生物信息学分析，发展为空间代谢组学方法。甘肃空间代谢组学和心脏
空间代谢组学：a）小鼠脑冠状切片图像显示亮场图像和拉曼光谱图像（b）脂质，蛋白质和DNA的拉曼光谱覆盖层（c）髓鞘结合蛋白(MBP)、Tuj1(III类β-微管蛋白)和4'，6-二氨基-2-苯基吲哚(DAPI)的代表性染色（d）小鼠大脑感兴趣区域的高分辨率显微拉曼图像(200×200μm)，显示与脂类(2885cm−1)、蛋白质(2940cm−1)和DNA(3000cm−1)相关的拉曼光谱峰（e）K-means聚类(n=2个聚类)显示不同的脑组织特征（f）与twok-means团簇相关的**平均拉曼光谱（g）根据m/z848.63和m/z844.52，主要髓鞘的空间代谢组成像显示灰质和白质分离，推测为Cer(D18：1/24：1)和PC(38：6)（h）灰质和白质的代表性的平均空间代谢质谱图(分别以绿色和红色表示) 甘肃空间代谢组学和心脏
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