GPCR是比较大的药物靶点家族,其功能研究涉及配体结合、第二信使产生、下游信号通路活化等多个层面。均相发光技术多方面渗透于此领域。对于配体结合竞争实验,可采用TR-FRET,将受体标记供体,配体标记受体。对于GPCR活化后比较关键的cAMP积累或IP3/DAG产生,均有成熟的均相检测试剂盒。例如,cAMP检测常采用基于抗体竞争原理的均相发光免疫分析。细胞裂解后,内源性cAMP与加入的标记cAMP竞争结合有限量的抗cAMP抗体。抗体结合事件通过FRET或Alpha技术被检测,信号强度与内源性cAMP浓度成反比。这类方法直接在细胞裂解液中进行,快速、灵敏,完美契合GPCR激动剂/拮抗剂的高通量筛选。均相化学发光在自身免疫性疾病诊断中的作用大吗?湖南均相发光解决方案

离子通道和转运体是重要的药物靶点,但传统电生理方法通量极低。基于化学发光的离子敏炎症料或蛋白,为高通量筛选提供了可能。例如,使用对钙离子敏感的水母发光蛋白(Aequorin)或基于荧光素酶的钙指示剂(如Photina)。当离子通道开放引起离子内流时,会触发这些蛋白的化学发光反应。将稳定表达该报告系统和目标离子通道的细胞系用于筛选,加入化合物后直接测量发光信号变化,即可高通量地发现通道的激动剂或阻断剂。类似原理也可用于钠、钾等离子通道或某些转运体的功能研究。湖北均相化学发光均相发光的原理体外诊断新机遇!均相发光新产品,助您抢占先机!

在传染病诊断领域,均相发光技术主要用于抗原或抗体的高灵敏检测。例如,利用TR-FRET原理,可以设计检测病毒抗原的均相免疫分析。将针对病毒抗原不同表位的两种抗体分别标记供体和受体,样本中若存在病毒抗原,则形成免疫复合物并产生FRET信号。该方法快速,可用于病原体筛查。在病毒学研究中,均相发光可用于评估病毒进入(如基于荧光素酶的报告病毒)、病毒复制或抗病毒药物的效果。其高通量特性有助于快速筛选广谱抗病毒化合物。
报告基因(如荧光素酶、β-半乳糖苷酶)是研究基因表达调控的常用工具。传统的报告基因检测通常需要细胞裂解和底物孵育多步操作。均相发光报告基因检测系统通过使用具有细胞膜渗透性的“前底物”(pro-substrate)或优化反应条件,实现了“一步加样”检测。例如,某些荧光素酶底物配方稳定,可直接加入含有细胞的培养液中,细胞裂解和酶反应同时发生,化学发光信号在数分钟内达到平台期并稳定数小时,便于在微孔板中连续或批量读取。这极大简化了基于报告基因的高通量药物筛选和信号通路研究流程。均相发光技术研究进展,浦光生物为您提供前沿资讯!

尽管优势明显,均相发光技术也存在一些挑战和局限性。首先,某些技术(如FRET)可能受到样本自身颜色(如血红蛋白)、浊度或某些化合物(如具有强荧光或淬灭特性的药物)的光学干扰。其次,均相检测通常对试剂的特异性和纯度要求极高,任何非特异性结合或聚集都可能导致假阳性信号。第三,开发均相检测方法需要进行复杂的探针设计和标记优化,前期开发成本较高。比较后,对于某些极低丰度的靶标,其灵敏度有时可能仍低于经过多步洗涤和信号放大的异相方法(如化学发光免疫分析CLIA)。专注体外诊断,均相化学发光冻干试剂,品质值得信赖!体外诊断均相发光技术
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相较于荧光或比色法,化学发光作为均相检测的信号系统具有多重独特优势。首先,它无需外部激发光源,从而完全避免了光源不稳定、样本自发荧光及光散射所带来的背景干扰,理论上能获得极高的信噪比和灵敏度。其次,化学发光反应产生的光子信号强度在一定范围内与反应物浓度直接相关,动态范围宽,可跨越数个数量级。再者,化学发光体系(如鲁米诺、吖啶酯)的反应动力学多样,可满足从快速闪光到持久辉光的不同检测需求。比较后,化学发光反应的启动通常由单一试剂(如过氧化氢、碱)触发,易于控制,非常适合自动化仪器上的顺序注射和即时读数。这些特性使其成为实现超灵敏、高稳健性均相检测的理想信号输出模式。湖南均相发光解决方案
热迁移分析(CETSA)用于研究药物在细胞或组织水平与靶蛋白的结合,传统方法依赖Western Blot,通量低。与均相化学发光免疫检测(特别是Alpha技术)结合形成的CETSA HT,实现了高通量化。细胞经药物处理和不同温度加热后裂解,针对目标蛋白的特异性抗体对(分别偶联Alpha供体珠和受体珠)被加入裂解液。只有未因热变性而沉淀的、保持天然构象的蛋白才能被两个抗体同时识别并拉近微珠产生信号。通过绘制药物处理组与对照组的热稳定性曲线,可以直观看到药物结合引起的蛋白热稳定性偏移(Tm变化),从而确认靶点结合并评估结合强度,广泛应用于早期药物发现中的靶点确证。POCT市场新机遇,浦光干式均相化...