江西重组药物支原体检测技术服务

检测限验证是支原体 NAT 方法（核酸扩增法）合规性的关键要求，法规明确界定需为每种目标支原体确定阳性检测临界值。验证流程需满足严格的实验设计：每种支原体至少进行三次单独的 10 倍梯度稀释，每次稀释后需制备平行管检测，再确保各稀释浓度获得 24 个检测结果。阳性临界值的判定标准为，该浓度下至少 95% 的试验运行能得到阳性结果，即 24 个样品中需至少出现 23 个有效阳性结果。这一严谨设计旨在确保 NAT 检测方法在实际应用中，能够稳定检出低浓度支原体污染，避免因检测灵敏度不足导致的安全风险，为生物制品质量控制提供可靠保障。

MycoSHENTEK^® 支原体 qPCR 检测试剂盒（2G）完全符合 EP 2.6.7 的全部验证要求，其检测灵敏度、特异性、耐用性均按药典标准完成完整性能验证，具备替代培养法和指示细胞培养法的合规资质。该试剂盒针对新型生物制品的检测痛点优化升级，经多种支原体菌株验证，灵敏度稳定达到 10 CFU/mL，满足法规对替代培养法的要求。同时，产品遵循 ISO13485 体系认证和 GMP-like 生产标准，可提供完整的验证报告、质检报告及菌株溯源文件，全程贴合各国药典监管要求，为企业合规检测提供坚实支撑。

为解决支原体检测的污染难题，湖州申科推出AdvSHENTEK^® 外源因子全自动核酸检测分析系统 + 一体化支原体检测卡盒的组合方案，以全封闭设计从根源规避污染。该方案只需一步开盖加样，后续流程完全封闭运行，物理隔绝核酸气溶胶污染，搭配 UNG 酶系统可进一步防止环境交叉污染，能节省 100% 污染排查时间。一体化检测卡盒相当于单独的迷你 qPCR 实验室，集成试剂准备、样品制备、扩增、分析全流程，无需复杂分区。同时，方案降低了对实验环境和人员的要求，普通实验室即可开展检测，人员经简单培训就能操作，彻底摆脱了传统 NAT 法对高技能人员和场地的依赖，大幅提升检测结果的稳定性。

全球主流药典均认可 NAT 法作为支原体检测的替代方法，但明确要求需经过充分验证并证明与传统方法的可比性。欧洲药典（EP）2.6.7 规定 NAT 法可作为替代方法，需开展供试品抑制性验证；美国药典（USP）63&77 要求替代方法需与培养法、指示细胞培养法均具备可比性，且 USP<77> 专门针对支原体 NAT 法的验证与检测制定了规范；日本药典（JP）G3-14-170 允许经适当验证后的 NAT 法替代传统方法；中国药典 3301 及相关指导原则明确，CAR-T、干细胞等新型产品可采用 NAT 法，但需充分验证其最低检出限不低于药典方法，早期需与药典方法并行使用。此外，各国法规均强调，NAT 法的选择、开发与应用需基于科学依据，充分考虑培养基、生产工艺、潜在污染菌株等因素。

对照菌株的合理配置是支原体培养法检测准确性的重要保障，湖州申科严格遵循 USP 标准制定菌株使用规范。每次检测需至少包含两株已知支原体菌株：一株为葡萄糖发酵型（如肺炎支原体或其等效种株），另一株为精氨酸水解型（如口腔支原体），通过两类菌株的平行对照，覆盖常见支原体检测场景。特殊场景下需额外补充菌株：检测昆虫细胞系时，需纳入螺原体（如 S.citri ATCC 29747、S.melliferum ATCC 29416 或等效菌种菌株），这类菌株营养需求更苛刻，且需匹配昆虫细胞系对应的较低孵化温度，确保特殊样品检测的针对性与有效性，避免因菌株配置不全导致漏检风险。

培养基的科学选择与合规使用是支原体培养法检测成功的基础，湖州申科按 USP 标准明确了三类推荐培养基的适用场景。Hayflick Media 用于支原体一般性检测，Frey Media 专门针对滑液囊支原体检测，Friis Media 则适用于非禽类支原体检测。为确保少量支原体（约 100cfu 或 100ccu）不被遗漏，需使用足够数量的固体与液体培养基开展检测；若选用其他替代培养基，必须严格符合 USP 标准要求。此外，每批培养基均需进行针对性的微生物检测（即营养特性测试），通过标准化的质量把控，避免因培养基性能缺陷导致检测失效，为后续检测流程提供稳定可靠的基础条件。