小鼠特性体型小，发育成熟时体重：雄性20~40g，雌性18~40g；面部尖突，长有19根长长的触须，耳耸立呈半圆形、眼大、鼻尖，尾长与体长约相等。尾部表皮覆有小角质鳞片。（大约200片鳞片）毛色因品系品种而异常见有：白色、野灰色、黑色、棕色、黄色、巧克力色和肉桂色等。近年来，基因工程技术不断实现突破，以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术得到了普遍运用，使实验鼠大规模生产成为可能，快速推动了实验鼠行业发展进程。与发达国家相比，我国实验鼠市场起步较晚，还处于发展早期，随着国内实验鼠企业培育技术逐渐成熟、产品种类愈加丰富，市场国产化率正在提升。基于CRISPR/Cas9技术，卡文斯实验鼠配套提供病理检测、基因型鉴定等增值服务。SPF大小鼠技术推广
卡文斯隆重推出基于CRISPR/Cas9技术的小鼠基因组编辑服务！CRISPR(ClusteredRegularlyInterspacedShortPalindromicRepeats)/Cas(CRISPR-associated)是近几年出现的一种由RNA指导Cas核酸酶对靶向基因进行特定DNA修饰的技术。它是细菌和古细菌为应对病毒和质粒不断攻击而演化来的获得性免疫防御机制。此系统的工作原理是crRNA(CRISPR-derivedRNA)通过碱基配对与tracrRNA(trans-activatingRNA)结合形成tracrRNA/crRNA复合物，此复合物引导核酸酶Cas9蛋白在与crRNA配对的序列靶位点处剪切双链DNA，从而实现对基因组DNA序列进行编辑；而通过人工设计这两种RNA，可以改造形成具有引导作用的gRNA(guideRNA)，足以引导Cas9对DNA的定点切割。基于CRISPR/Cas9技术，OT1小鼠周龄常州卡文斯实验鼠饲养环境恒温恒湿，减少环境应激影响。
实验动物是研究疾病发生/防治机制、新型药物的基础，包括实验兔子、实验猴子、实验猪、实验青蛙、实验鼠等。其中，实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物，其基因组中拥有人类99%蛋白编码基因的同源基因，是目前应用较广阔的实验动物，具有繁殖数量多、发育快、性成熟早、妊娠期短、饲养成本低、实验重复性高、对外来刺激敏感、遗传信息清晰等优点。实验鼠在医学领域应用十分广阔，可用于微生物学领域，研究吸血虫、锥虫、支原体、沙门氏菌等微生物寄生虫致病原理；可用于免疫学领域，研究免疫缺陷机理和相关药物；可用放射学领域，研究放射线照射剂量和辐射效应；可用于药物筛选领域，筛选药物对疾病的作用，获得每种药物治疗效果；可用于安全测试领域，判断新产品安全性；可用于遗传学领域，研究遗传病基因结构和功能，构建人类遗传病动物模型；可用于老年学领域，探究抗老老药物效果。
实验鼠会不会咬人？咬了之后会不会得病？内心慌张惊恐怎么办？一般在受到惊吓的情况下小鼠才会咬人。其中黑色小鼠比白色小鼠更加“凶残”一些。但是，只要你克服了心理恐惧，再加上正确的手法，小鼠轻轻松松get到手。就算小鼠咬到你了，请不要担心，因为它们的居住环境比人类还要干净。通常科研工作者会将实验鼠饲养在专门的动物房中，会有专职人员“伺候”它们的吃喝拉撒。对于更娇贵的免疫缺陷的小鼠来说，它们会依据免疫系统的缺陷程度住在不同SPF(Specific-pathogen-free无特定病原体)级的实验室中，除了不能到处跑，较终要献身科研外，简直生活得不要太幸福，连科研人员见它们一面，都要穿上层层的防护服，通过一道道除菌装置。被咬到之后，千万不要慌张，因为你除了疼和血液流出之外，不会受到其他损失。如果实在控制不住自己的惊恐情绪，也请千万不要把小鼠扔出去！因为它们的天性是贴着角落跑，如果你把它们扔出去，几乎没有再把它们抓回来的可能性了。从某种意义上说，有着这样一种逻辑关系：扔出去的小鼠=抓不住=样品丢失=实验失败=半年白做=毕业更加遥远=头秃+抑郁=危害身心健康！卡文斯实验鼠的微生物学检测涵盖细菌、病毒、寄生虫等指标。
品系名称:Wistar-Kyoto品系简称:WKY品系类别:近交系大鼠品系毛色:白色产品状态:活物品系描述:1971年NIH从Kyoto医学院引入的Wistar种群中得到该品系，为超出平常血压大鼠的对照品系，雄鼠动脉收缩压为18.6-20kpa，雌鼠为17.3kpa。WKY大鼠的特点:(1)忧郁、焦虑等行为异常;(2)内分泌异常，容易应激与Wistar大鼠相比，对应激刺激具有高反应性，可能与下丘脑-垂体-肾上腺轴和下丘脑-垂体-甲状腺轴异常调节有关;(3)代谢异常。应用领域:用作超出平常血压对照、多动症(ADHD)模型对照、抑郁症模型。卡文斯实验鼠的遗传背景清晰，实验数据更具可比性。II型糖尿病大鼠供货时间
常州卡文斯实验鼠广泛应用于药物研发、基因编辑等领域。SPF大小鼠技术推广
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。SPF大小鼠技术推广
