腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。常州卡文斯实验鼠配套提供详细遗传背景和饲养指南。肠道肿瘤小鼠欢迎选购
辅助生殖凭借体外受精+胚胎移植技术手段，可以挽救因小鼠年龄较大、微生物染上、生殖局部身体畸形或发育异常、肥胖导致交配困难等因素引起的不孕不育品系。小鼠业务详情目前主要的冻存方式是，胚胎冷冻和精子冷冻。其中精子冷冻复苏和胚胎冷冻复苏两种方法。其中精子冷冻复苏和胚胎冷冻复苏两种方法对比如下：冷冻方式精子冷冻胚胎冷冻用鼠量3只12W-24W可育成年雄鼠，0只雌鼠3只12W-24W可育成年雄鼠，30-40只雌鼠遗传物质数冻存至少20支麦管的精子液体冻存约400枚胚胎，每管冻存30-40枚胚胎技术特点精子复苏后通过IVF操作可一次性得到大量同日龄胚胎复苏后无需经过IVF操作，即可直接进行移植适用于杂合子或者纯背景的品系保种(比如B6/B适用于单基因/多基因纯合子或者特殊背景的品系保种*也可接收外来遗传物质进行复苏移植服务3XTg-AD小鼠繁育常州卡文斯实验鼠在心血管疾病研究领域具有优异建模能力。
卡文斯隆重推出基于CRISPR/Cas9技术的小鼠基因组编辑服务！CRISPR(ClusteredRegularlyInterspacedShortPalindromicRepeats)/Cas(CRISPR-associated)是近几年出现的一种由RNA指导Cas核酸酶对靶向基因进行特定DNA修饰的技术。它是细菌和古细菌为应对病毒和质粒不断攻击而演化来的获得性免疫防御机制。此系统的工作原理是crRNA(CRISPR-derivedRNA)通过碱基配对与tracrRNA(trans-activatingRNA)结合形成tracrRNA/crRNA复合物，此复合物引导核酸酶Cas9蛋白在与crRNA配对的序列靶位点处剪切双链DNA，从而实现对基因组DNA序列进行编辑；而通过人工设计这两种RNA，可以改造形成具有引导作用的gRNA(guideRNA)，足以引导Cas9对DNA的定点切割。基于CRISPR/Cas9技术，
品系名称:APP/PS1(阿尔兹海默症)品系编号:C000111品系背景:C57BL/6J]品系描述:APP/P51是表达嵌合小鼠/人淀粉样蛋白前体蛋白(MO/HUAPP695-5we)和突变的人早老素1(P51-DE9)的双转基因小鼠，均定向于中间系统神经元。这两种突变都与早发性阿尔茨海默病有关。转基因小鼠在6到7个月大时在大脑中形成B-淀粉样蛋白沉积。6到15个月大的小鼠在B-淀粉样蛋白负荷方面表现出性别差异。同时转基因小鼠伴随一定癫痫发病率，随着小的年龄增加，发病率逐渐升高。应用领域:应用于神经退行性疾病、老年痴呆症等方面的研究。卡文斯实验鼠在神经科学领域的研究中表现优异。
转基因小鼠（TG）模型是通过人工操作将外源基因整合到小鼠的基因组中，使其在遗传上发生改变，并表达新的基因，从而获得转基因小鼠。应用方式如下：借助显微注射技术将外源基因随机整合到小鼠基因组中，以获得过表达或条件性过表达某些基因的基因工程小鼠模型db基因为4号染色体隐性突变基因，能导致肥胖伴糖尿病，纯合子有过超高出寻常的血糖症;其瘦素受体基因失去功能，纯合的糖尿病自发突变小凰在出生后2周内就发生高胰岛素血症，血浆胰岛素开始升高，在3-4周龄时产生可以辨认的肥胖表型，4-8周血糖升高，同时胰岛素分泌增加至正常值的数倍，但组织中的胰岛素受体明显少于正常，并且受体的结合力也低于正常，8周后就发展为非常严重的过超高出寻常的血糖症，期间伴有胰岛素抵抗，B细胞功能衰竭，，一般在8~10个月内死亡，临床症状和病程比ob/ob更严重，寿命更短;纯合小多食、多饮、多尿，且纯合db/db小不育应用领域:更广地应用于糖尿病、肥胖症、伤口完成疗程延迟、丘脑/垂体后叶缺陷、胰脏损伤、生育障碍及免疫和炎症研究。常州卡文斯实验鼠在行为学实验中表现稳定，数据可靠。APP小鼠
常州卡文斯实验鼠广泛应用于药物研发、基因编辑等领域。肠道肿瘤小鼠欢迎选购
实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。肠道肿瘤小鼠欢迎选购
