痉挛型脑性瘫痪(SCP)大鼠模型【目的】痉挛型脑性瘫痪(SCP)大鼠模型建立【动物】SPF级SD大鼠，雄性，周龄6~8W，体重：200~250g【方法】1、大鼠麻醉，颅顶脱毛备皮；2、大鼠脑定位仪固定大鼠，颅顶正中切口，长度约2cm开口暴露前囟及矢状缝；3、缝线将皮肤左右分开固定，前囟后10mm、矢状缝左侧；4、微量注射器移至开孔处修正骨孔，注射器垂直向颅内插入，缓慢注射无水乙醇15ul，注射完移除注射器，棉球压迫止血；5、缝合创口后维持25°体温，等待苏醒，观察大鼠状态。【观察】术后3天模型大鼠摄食减少、右侧肢体跛行、右前肢不负重、右前肢及右前爪屈曲痉挛明显，顺时针绕圈前行，2周后症状减轻，大鼠于术后4周开始给予动物行为学观察【检测】HE检测对比观察脑组织是否出现细胞水肿,排列不规则,结构紊乱,核固缩,染色体分布不均匀,变性坏死,核糖体消失,白质软化灶和空囊形成,小胶质细胞浸润,星形胶质细胞肥大、增生等病理表现。旷场测试（OpenFieldTest）：实验用于评估大小鼠的活动性和探索性行为。动物被放置在一个较大的开放性场地内，然后记录它们的运动轨迹和停留时间。用来评估动物的活动性、焦虑程度、压力反应等。水迷宫测试。四氯化碳诱导急性肝损伤大鼠模型。实验动物模型建模
缺点：该移植模型的原发出现与转移发生之间时间间隔短，不利于药物药效研究;且细胞为鼠源，与人类有一定的差异。2异种移植模型异种移植模型是将人类的细胞或组织移植入免疫缺陷型实验动物体内。此模型一般采用免疫缺陷型小鼠，例如无胸腺裸鼠、CB17-SCID小鼠、NOD/SCID小鼠、NSG小鼠。一般来说，免疫缺陷程度越高，成瘤性越好。的相关研究中，人源细胞系异种移植(cell-line-derivedxenograft，CDX)模型和患者组织异种移植(patient-derivedxenograft，PDX)模型已得到广泛应用。CDX模型方法：将5×106的人A375黑色素瘤细胞皮下注射NOD/SCID小鼠腹侧的双侧，成功构建黑色素瘤CDX模型。PDX模型方法：有研究者将93个新鲜的患者组织切成2×2×2mm3碎片的大小，皮下接种6周大的NOD/SCID雌性小鼠，建立PDX模型。优点：保留了病人的组织学和遗传学特征，可模拟溃疡状态对人类黑色素瘤预后的影响。缺点：此模型移植后的潜伏期长，连续传代后鼠基质被人类基质替代，移植率可变，免疫系统受损，有移植物抗宿主病的可能性以及某些免疫细胞功能的缺乏。三、转基因小鼠模型可以通过异位表达基因，引入特定的致突变或灭活抑制基因来对小鼠进行转基因黑色素瘤模型的构建。江苏实验动物模型饲养睾丸去势致骨质疏松大鼠模型。
特发性肺纤维化（IPF）小鼠模型建立【方法】1、BALB/c小鼠麻醉，6-8周龄，体重20~25g，仰卧固定于实验台上，颈部去毛后酒精消毒，切开皮肤，逐层暴露气管；2、将1mL注射器经两气管软骨环间隙朝向心端刺入气管，回抽无阻力；3、注入博莱霉素（约4~5mg/kg）再向气管内注入～3次，使药物在肺部分布均匀；4、以大鼠身体长轴为中心，正反快速旋转鼠板1～2分钟。缝合皮肤，局部聚维酮碘消毒(或用青霉素消毒)防止，室温保持在24～25℃，待动物自然清醒后置笼内常规饲养。肺纤维化模型发展时间：2周可见肺系数(肺重/体重×100％)、羟脯氨酸含量明显升高。显微镜下可见炎症细胞浸润，以淋巴细胞、单核吞噬细胞为主，并有肺泡壁增厚、成纤维细胞增生等Ⅱ级肺泡炎表现。4周可见肺间质内有大量散在绿染的胶原纤维，肺泡结构破坏，见有许多纤维细胞等Ⅲ级肺间质纤维化病变。大鼠模型病理组织学与病理生理学改变与人类肺间质纤维化相似。其病变早期表现为渗出性肺泡炎，炎症细胞在病变处聚集增多。晚期为肺间质纤维化，间质细胞增生，基质胶原聚集取代正常的肺组织结构。【检测】组织病理切片HE染色。
脂多糖致脓毒血症肝损伤小鼠模型【方法】1、小鼠称重，按体重计算药物用量。2、脂多糖（LPS）药物配制，生理盐水溶解，根据小鼠体重配制终浓度为10mg/kg，200ul/只腹腔注射使用。3、抓取小鼠，捏紧小鼠颈背部皮肤，小拇指无名指叠加固定小鼠左下肢充分暴露小鼠腹部。4、小鼠的头部向下，这样腹腔中的就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤肠道。进针的动作要轻乘，防止刺伤腹部。5、注射器吸取准备好的药物，腹腔左下部与身体呈45度角左右斜角进针注射LPS，注射完药物后，轻微旋转针头退针，防止漏液。6、造模18h后处死小鼠解剖取组织进行组织病理学检查。【检测】肝组织有无：1、肝水肿；2、肝出血；3、炎性细胞浸润；4、肝组织肿大等病理改变。再观察肝损伤程度，各按程度积分为：0分为无该项病理改变；1分为病理变化轻且很局限；2分为病理变化中等且局限；3分为病变中等但或局部很；4分为非常的理改变。求出各动物的各项病理改变的总和，作为肝损伤程度积分。恶性黑色素瘤是起源于神经嵴的黑色素细胞恶性。
然后再入固定液，但要注意防止组织损伤。要熟悉采集部位。要能准确的按解剖部位采集，如胰腺，一般取胰岛较多的胰腺尾部；肺应取有细支气管及带有软骨片的小支气管部。如果实验需进行多组织样本的采集，采集顺序应按照：消化，神经系统，皮肤，肌肉等的顺序进行。选好组织块的切面。熟悉某些组织成分安排，然后决定其切面的走向；如一长管状以横切面较好。切除不需要的部分。特别是组织周围的脂肪等，应尽可能掉，否则给固定、脱水、浸蜡、切片等带来一些不必要的问题。组织样品的固定（1）固定的方法：①小块组织固定法：从动物取下的小块组织，立即置入液态固定剂（这是应用经常的方法）。②注射/灌注固定法：某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内部或需要对整个脏器或整个动物进行固定，这时宜采用注射固定法，将固定液注入血管，经血管分支到达整个组织和全身，从而得到充分的固定。另，空腔组织比如肺，肺内含有空气，固定液难以渗入，建议先做肺灌注，使得肺充盈满固定液以后再进行保存，如果空腔中气体没有有效排出，后续可能影响固定效果（没有灌注的肺组织会浮在液体表面不利于固定，切片以后也会看到很多的空泡）。③蒸汽固定法：比较细小而薄的标本。用血管内线栓阻断法制备大鼠 MCAO模型。已被脑血管病研究者接受和采用。实验动物模型建模
动物模型的优越性主要表现在以下几下方面。实验动物模型建模
代谢组学的研究对象大都是相对分子量在1000以内的小分子物质，因此常用的血液样本在取样后，应小心操作，防止溶血，尽快分离出血清，分置于温环境下保存。由于用于病理实验的动物组织采集相对其他样品的采集，操作更繁琐，在处理过程中许多细节容易忽略，造成数据不完美（甚至不能用）。因此接下来将重点介绍组织样品采集的注意事项及其固定。组织样品采集注意事项组织应新鲜，操作时间尽可能短，否则细胞发生死后变化、自融及现象。是动物心脏还在跳动时采集，样本取出后在5分钟以内置于固定液内，避免长时间暴露在空气环境中。组织块尽量小而薄。组织块的厚度以不超过5mm为宜，较为理想的厚度为2mm左右，主要目的是使固定液迅速而均匀的渗入组织块内部。勿使组织块受挤压。在采集过程中，应尽量选择较为锋利的手术器械，如手术刀片等，避免操作过程中挤压挫伤标本。挤压过的组织均不可用。固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜，组织能够在容器内自由移动。尽量保持组织的原有形态。新鲜组织经固定后，或多或少产生收缩现象（如胃肠），为此可将组织展平，以尽可能维持原形。保持组织清洁。组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等，可用生理盐水冲洗。实验动物模型建模
