应根据所检测指标的要求，需采取不同策略处理。在如今分子生物学当道的现实背景下，动物实验除了对实验动物的体征及生理指标进行的监控外，各种分子检测甚至是组学检测也开始大行其道，动物实验结束之后的机制研究成为了实验的重头戏。一般来说，动物实验检测对象主要包括：（1）体液中各类因子定性及定量检测由于此类检测对象多为蛋白及各类小分子物质，因此在取样过程中应注意防止此类物质降解，在获取后，应及时置于温（≤-80℃）进行保存，在后续实验过程中，也应当注意保存条件的稳定性，避免反复冻融。常用的方法便是酶联免疫吸附测定（ELISA），除此之外，可利用生化分析仪及不同检测方法的试剂盒（比色法、比浊法等）方法对各类生化指标及因子进行定性及定量检测。（2）组织病理、生理变化及免疫组化检测常用的病理检测多使用H&E染色对细胞质及细胞核进行染色标记，以观察细胞变化。除此之外，许多特殊染色也在病理生理变化中得到了应用，如利用Masson染色检测组织纤维化病变，Nissl染色检测神经元损伤，β-半乳糖甘酶染色检测细胞衰老等。此外，还可以通过免疫组化技术对某些特异性标记物进行免疫显色检测，达到原位定性或定量检测的目的。。急性肺损伤(acute lung injury，ALI)。江苏脑定位动物模型构建
痉挛型脑性瘫痪(SCP)大鼠模型【目的】痉挛型脑性瘫痪(SCP)大鼠模型建立【动物】SPF级SD大鼠，雄性，周龄6~8W，体重：200~250g【方法】1、大鼠麻醉，颅顶脱毛备皮；2、大鼠脑定位仪固定大鼠，颅顶正中切口，长度约2cm开口暴露前囟及矢状缝；3、缝线将皮肤左右分开固定，前囟后10mm、矢状缝左侧；4、微量注射器移至开孔处修正骨孔，注射器垂直向颅内插入，缓慢注射无水乙醇15ul，注射完移除注射器，棉球压迫止血；5、缝合创口后维持25°体温，等待苏醒，观察大鼠状态。【观察】术后3天模型大鼠摄食减少、右侧肢体跛行、右前肢不负重、右前肢及右前爪屈曲痉挛明显，顺时针绕圈前行，2周后症状减轻，大鼠于术后4周开始给予动物行为学观察【检测】HE检测对比观察脑组织是否出现细胞水肿,排列不规则,结构紊乱,核固缩,染色体分布不均匀,变性坏死,核糖体消失,白质软化灶和空囊形成,小胶质细胞浸润,星形胶质细胞肥大、增生等病理表现。旷场测试（OpenFieldTest）：实验用于评估大小鼠的活动性和探索性行为。动物被放置在一个较大的开放性场地内，然后记录它们的运动轨迹和停留时间。用来评估动物的活动性、焦虑程度、压力反应等。水迷宫测试。江苏基因敲除动物模型饲养大脑中动脉(MCA)为临床上发生脑缺血损伤常见的部位之一。
四氯化碳诱导急性肝损伤大鼠模型【方法】1、将大鼠随机分配至2组中，每组5只，正常喂食喂水7d后进行试验；2、大鼠体重为200g±10g，按组别给予药物：生理盐水组每只腹腔注射1ml生理盐水、模型组每只按5ml/kg背部皮下注射四氯化碳3、各组药物注射24h后取材进行相关检测（注：注射前按比例混合四氯化碳：橄榄油=1：）【评定】给予四氯化碳后TP含量下降，ALT和AST含量上升【检测】生理盐水组肝索结构清晰，血管内无淤血，血管周围无炎症病灶，肝小叶结构清晰；给予四氯化碳后肝索排列紊乱，结构不清，存在大量坏死区域且肝索结构消失，有大小不一的空泡结构，多数血管内有淤血并伴有粉染蛋白样物质，血管周围有炎症反应灶，少量红细胞渗出；西维来司钠介入后肝索排列不清晰，存在部分坏死区域且肝索结构消失，有大小不一的空泡结构，少数血管内有淤血并伴有粉染蛋白样物质，血管周围有炎症反应灶，极少量红细胞渗出。
实验样本分类实验一般采取样本有：血液样本、组织样本和细胞样本。通常，组织样本采集后，应立即用等渗溶液（PBS或生理盐水）尽量把血液漂洗干净（除非血液也是分析对象），用滤纸或纱布吸干，把样本分切成几分，每份的体积约2个黄豆大小，每份用一个管子装。血液样本的采集应根据不同实验的要求，将会采取不同策略。血清样本：全血中不加抗凝剂，血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黄色透明液体。（全血标本室温放置2小时3000rpm/min离心15min）血浆样本：全血中加抗凝剂，血液凝固后取出的含凝血因子的淡黄色透明液体。（可用EDTA或肝素作为抗凝剂，标本采集后30分钟内于2-8℃，3000rpm/min离心15min）如果是做生化\ELISA等检测可以考虑血浆和血清，根据获得的样本量可考虑分装成100-500μl/管，可避免反复冻融造成的检测误差。生化：建议优先选择血清，其次选择肝素抗凝血浆；ELISA：建议优先选择血清，其次选择肝素或EDTA抗凝血浆；凝血实验：只能选择枸橼酸钠抗凝血浆；血常规：只能选择EDTA抗凝全血；如果要收集其中的白细胞、血小板等建议用抗凝全血。如果要做流式建议用专门的流式用血液收集管，防止表面抗原的丢失，或者尽快安排就近检测。样本处理取样完后。博莱霉素是具有多种抗肿瘤作用的多组分，其毒副作用之一是引起肺纤维化。
伴vonFreyhairs检测）热板法大/小鼠甩尾法大/小鼠热辐射致痛法大/小鼠压痛法大/小鼠VonFreyhairs法大/小鼠醋酸扭体法小鼠福尔马林致痛法大/小鼠佐剂CFA引起的疼痛大/小鼠角叉菜胶致痛模型大/小鼠LPS诱导痛模型大/小鼠脊神经选择性结扎（L5/L6）大/小鼠坐骨神经分枝选择性损伤模型（SNI）大/小鼠糖尿病疼痛、切口疼痛，性疼痛模型大/小鼠抗痴呆小鼠获得性记忆障碍模型（6道小鼠跳台视屏分析系统）小鼠小鼠记忆巩固不良模型（6道小鼠跳台视屏分析系统）小鼠小鼠记忆再现障碍模型（6道小鼠避暗视屏分析系统）小鼠小鼠明暗箱法（4道小鼠明暗箱视屏分析系统）小鼠大鼠获得性记忆障碍模型（Morris水迷宫视屏分析系统）大鼠小鼠脑内乙酰胆碱酯酶活力测定小鼠D-半乳糖致小鼠痴呆模型小鼠新物体识别实验大鼠APP/PS1双转基因小鼠模型（Morriswatermaze,CognitionWall）转基因小鼠体外实验细胞水平。合理建立周围性面瘫动物模型对进一步深入研究具有重要意义。西藏高脂高糖动物模型
胆管结扎诱导炎症性肝损伤和肝纤维化小鼠模型。江苏脑定位动物模型构建
皮肤浅II°及深II°烫伤大鼠模型一、服务信息1、动物模型名称：皮肤浅II°及深II°烫伤大鼠模型2、实验动物种属：SD大鼠3、实验动物性别：雌雄不限4、实验动物年龄：成年5、实验动物体重：160-200g6、实验动物环境：SPF级二、服务项目服务编号服务内容服务周期价钱DH2025皮肤浅II°及深II°烫伤大鼠模型1周询价1、实验方法：热力致皮肤损伤法。麻醉大鼠，根据体重腹部备皮，然后固定于实验台上。将大鼠移近加热纯净水的烧杯，将纱布条浸入热水中，待水温恒定于99℃时，取出纱布，立即平铺于待烫部位，于纱布接触大鼠皮肤后开始计时。致伤3s为浅II°烫伤，致伤10s为深II°烫伤。2、检测标准：a.皮肤大体观察：致伤3s大鼠局部皮肤发红、轻微水肿。愈合后毛发生长良好，有少量红褐**素沉着，皮肤轻微挛缩，表皮光滑；致伤10s大鼠局部皮肤发白、水肿。愈合后毛发生长良好，皮肤瘢痕形成，表面粗糙不平。b.皮肤组织病理学观察：致伤3s大鼠表皮层次尚清楚，细胞明显肿胀、变性，层次结构尚清楚，细胞核结构不清；致伤10s大鼠表皮细胞部分脱落，结构不清，明显变性、坏死，部分细胞已溶解。三、交付标准:1.提供动物模型构建过程中的原始实验记录及数据图片。江苏脑定位动物模型构建
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