北京重组蛋白用宿主细胞蛋白（HCP）残留检测桥接验证

宿主细胞蛋白（HCP）的来源中，常伴随核酸、胞膜脂类及培养基中的氨基酸等非HCP成分，这些成分会干扰总蛋白检测的准确性，因此在检测前需开展纯化前处理，同时对总蛋白检测方法实施方法学确认。HCP本身属于多蛋白混合物，不同总蛋白定量方法的检测结果会存在一定差异，这也是造成HCP免疫检测方法结果不一致的原因之一。若不同HCP蛋白定量方法的检测结果差异较大，通常需同时采用2种及以上经确认的方法进行检测，随后取平均值。总蛋白检测方法的定量限通常只能达到μg/mL级别，而HCP检测试剂盒的产品校准品浓度则处于ng/mL级别。将HCP高浓度原液稀释至低浓度产品校准品的过程中会产生稀释误差，因此需对产品校准品重新进行标定赋值。编辑分享用多种方法确认检测结果时，如何选择合适的方法组合？总蛋白检测定量限与HCP校准品浓度差异大的原因是什么？有哪些方法可以降低非HCP成分对检测的干扰？

宿主细胞蛋白（HCP）是生物制品中源自细胞基质的残留杂质，异质性特征明显。其复杂性主要体现在三方面：①理化特性差异：包含胞内与分泌蛋白（涉及关键生理功能），等电点（pI 3-11）、分子量（5-250kDa）及疏水性的区间跨度大；②上游工艺影响：不同发酵工艺（如细胞株选择、培养条件控制）会诱导独特的翻译后修饰（PTM），进而增加 HCP 的总量与生化复杂性；③下游工艺与产物特性干扰：抗体、细胞因子等重组蛋白或病毒类药物的纯化工艺，会选择性残留特定 HCP；同时，产物形式（如大肠杆菌的包涵体 / 可溶性表达）也会直接影响 HCP 的残留谱。针对特定生产工艺开发定制化检测方案，是准确监控 HCP 残留的关键所在。

全球范围内快速增长的抗体、蛋白类等生物药，均由对应的工程细胞生产制备。在生物制品生产流程中，宿主细胞产生的内源性蛋白（即宿主细胞蛋白，Host Cell Proteins, HCPs），会随不同工艺环节部分残留在终产品中。HCPs 作为外源蛋白，可能在不同程度上诱发机体免疫应答，进而引发过敏反应或其他不良反应；此外，部分残留 HCPs 具备蛋白酶或脂酶活性，可能造成蛋白药物或辅料降解，从而加大药物质量与疗效的不稳定性。基于上述风险，对药物中 HCPs 开展定性与定量检测至关重要。全球主要药典（如美国药典、欧洲药典、中国药典）均针对 HCPs 检测制定了具体要求与标准。

为更优管控工艺、保障产品质量稳定，各国监管机构均要求提供所用宿主细胞蛋白（HCP）残留检测ELISA试剂盒的抗体覆盖率数据。通常需开展覆盖率分析的场景主要有以下四类：①临床II期后，若仍使用商品化试剂盒，需评估其抗体覆盖率是否能持续满足质量监控需求；②临床III期及后续阶段，若产品研究者开发了平台化或工艺专属型HCP监测方法，此类试剂盒使用前需评估其覆盖率水平与商业化试剂盒覆盖率水平的差异；③申报阶段若未提交覆盖率数据，监管机构可能向企业提出补充提交的要求；④产品上市后，若发生生产场地变更、工艺变更、HCP分析方法变更等情况，研究者需评估变更前后抗体覆盖率水平的差异，以及该差异对药品质量与安全性的影响。

湖州申科生物推出的宿主细胞残留蛋白检测全自动 ELISA 分析系统，集成了标曲制备、样本加样、恒温孵育、板孔清洗及结果检测等全流程操作功能。系统配备的高精度前处理模块与检测模块，能通过准确控制实验参数，切实降低人为操作误差，保障实验结果的稳定性与准确性。该系统采用多模块单独运行设计，可实现不同检测任务的并行处理，大幅缩短实验周期，提升整体实验效率。在保障结果可靠性的前提下，系统实现了 ELISA 实验的自动化操作、流程标准化与结果快速输出，降低了对实验人员的技能要求，同时通过优化资源配置降低检测成本。此外，系统内置完善的数据管理功能，可满足实验数据完整记录与全流程审计追踪的需求，严格契合 21 CFR Part 11 法规要求，且配备三级权限管理机制，进一步保障实验数据的安全性与规范性。

湖州申科生物搭建起专业化宿主细胞蛋白（HCP）残留检测平台，采用 ELISA 技术对宿主细胞蛋白总量展开分析，严格控制 CV 偏差与回收率指标，确保实验结果的真实性，其研发的试剂盒及抗体具备高灵敏度、强特异性等优势。该平台在技术服务层面提供两类关键支撑：一是针对 CHO、大肠杆菌（E.coli）、酵母等多种宿主的 HCP 残留检测服务，可直接输出蛋白残留量与样品回收率数据；二是配套的样品适用性验证体系，借助基质定量下限验证、样品稀释度验证、准确性验证及精密度验证（包含重复性与中间精密度）等多维度检测方案，搭配完整的试剂盒性能报告，保障检测结果的准确性与可溯源性，为生物制品工艺杂质控制提供可靠支持