1st Strand cDNA Synthesis Kit(RNase H-)的逆转录过程是将RNA模板转换成cDNA的过程。这个过程通常包括以下几个步骤:模板RNA的准备:确保RNA模板的质量和纯度,可能需要使用DNase I来去除RNA样品中的DNA污染。逆转录反应体系的配制:根据试剂盒的说明,将RNA模板、引物(如Oligo(dT)、随机六聚体或基因特异性引物)、dNTPs、逆转录酶和缓冲液等组分混合在一起。逆转录酶的启用:如果需要,可能要将反应体系预热到一定温度以达到逆转录酶。逆转录反应:在适宜的条件下,逆转录酶会根据RNA模板合成一条互补的DNA链。这个过程通常在一定的温度范围内进行,以保证酶的活性和反应的效率。反应的终止:逆转录反应完成后,通常通过加热到较高温度来终止反应,以防止cDNA的进一步合成。产物的纯化:合成的cDNA可能需要通过某些方法(如柱层析或沉淀)进行纯化,以去除未反应的dNTPs、RNA模板和酶等。cDNA的检测和应用:合成的cDNA可以用于后续的PCR、qPCR、克隆、测序等实验。蛋白在表达过程中形成包涵体,需要通过复性步骤恢复其活性。这通常涉及物质的存在下进行蛋白质的重折叠。Recombinant Human IL-22R alpha 1 Protein,hFc Tag

PCR产物直接进行电泳分析通常涉及以下步骤:PCR扩增:首先使用PCR Master Mix和特定的引物对目标DNA片段进行扩增。PCR产物的准备:如果使用的是含有预混凝胶加载染料的PCR Master Mix(如某些Blood Direct PCR Master Mix),则PCR产物在扩增后已经含有了适合电泳的染料。如果没有使用含染料的Master Mix,则需要在PCR反应完成后向产物中添加适量的凝胶加载染料。电泳槽的准备:清洁电泳槽,确保没有灰尘或残留物。安装电泳板和梳子,注意密封以防缓冲液泄漏。灌注缓冲液:向电泳槽中灌注适量的电泳缓冲液,常用的缓冲液有1X TAE或1X TBE。PCR产物的加载:将PCR产物轻轻混合均匀,避免气泡的产生。使用移液枪或微量移液管将PCR产物加入到凝胶孔中。如果PCR Master Mix中已含有染料,通常不需要额外添加。电泳条件的设置:根据PCR产物的大小和凝胶的浓度选择合适的电压和时间进行电泳。例如,较小的DNA片段可能需要较高的电压,而较大的片段则可能需要较低的电压和更长的时间。Recombinant Mouse Bcl-xL可以利用现有的计算工具,如CRISPR design tools,预测gRNA的活性和特异性,以辅助实验设计 。

pA-Tn5转座酶是一种经过改造的高活性Tn5转座酶,与ProteinA融合,形成一种新型融合酶,应用于CUT&Tag技术中,用于研究蛋白质与基因组DNA的相互作用。这种融合酶具备以下特点:1.**高活性**:pA-Tn5转座酶是超高活性的突变形式,体外转座效率比野生型高1000倍。2.**ProteinA融合**:pA-Tn5转座酶的N端结构域为ProteinA的一部分,可以与免疫球蛋白的Fc区相互作用,特别是与大多数哺乳动物的IgG结合。3.**Tn5转座酶活性**:C端结构域为Tn5转座酶,能够特异性识别转座子两端反向重复的ME序列(MosaicEnd),并在形成转座复合体后随机插入靶DNA中。4.**应用广**:适用于CUT&Tag技术、高通量测序建库、ATAC-seq等,特别适用于早期胚胎发育、干细胞、以及表观遗传学等研究领域。5.**操作简便**:pA-Tn5转座酶的使用简化了实验步骤,可以在一步反应中实现DNA片段化和接头连接,从细胞到二代测序文库的转化过程需9小时。6.**低细胞投入量**:CUT&Tag技术允许从低至60个细胞的样本中获得结果,甚至可以应用于单细胞水平的研究。7.**高质量结果**:pA-Tn5转座酶的使用可以保证DNA片段化,同时获得的蛋白纯度高、核酸残留低。
Lambda核酸外切酶的活性表现在其高度特异性和过程性地消化5'端磷酸化的双链DNA。以下是一些关键点,描述了Lambda核酸外切酶的活性特征:1.**高度过程性(HighlyProcessive)**:Lambda核酸外切酶是一种高度过程性的5'→3'外切酶,这意味着它能够连续消化多个核苷酸,而不需要在每一步之后重新结合底物。2.**底物特异性(SubstrateSpecificity)**:该酶选择性地消化5'端磷酸化的双链DNA链,对单链DNA和非磷酸化DNA表现出低活性。3.**活性定义(ActivityDefinition)**:一个活性单位定义为在37°C下,30分钟内在50μl反应体积中,使用1XLambdaExonucleaseReactionBuffer和1μg声波破碎的双链[3H]-DNA底物,产生10nmol酸溶性脱氧核苷酸所需的酶量。4.**反应条件(ReactionConditions)**:通常在37°C下进行孵育,使用1XLambdaExonucleaseReactionBuffer,该缓冲液包含67mMGlycine-KOH,2.5mMMgCl2,50µg/mlBSA,pH值为9.4。5.**热失活(HeatInactivation)**:通过在75°C下加热10分钟可以使Lambda核酸外切酶失活。6.**特定活性(SpecificActivity)**:Lambda核酸外切酶的特定活性为50,000单位/毫克蛋白。

磁珠本身并不直接参与电泳过程,但它们可以用于电泳后的样品处理,特别是在核酸(DNA或RNA)的提取和纯化过程中。以下是使用磁珠进行电泳后样品处理的一般步骤:1.**凝胶电泳**:-首先,将DNA或RNA样品通过凝胶电泳进行分离。凝胶通常是琼脂糖或聚丙烯酰胺凝胶,根据样品的大小和类型选择合适的凝胶浓度和缓冲体系。2.**观察和切割**:-电泳完成后,使用紫外线照射凝胶并使用适当的染料(如EB或SYBRGreen)对DNA或RNA进行染色,以在紫外光下观察到DNA或RNA的条带。3.**样品提取**:-确定目标DNA或RNA条带后,使用干净的工具(如切割器或移液枪)从凝胶中切割出含有目标分子的凝胶片段。4.**磁珠准备**:-根据磁珠试剂盒的说明书,准备磁珠。通常包括磁珠的重悬和可能的表面修饰,以确保它们能够特异性地结合目标核酸。5.**样品与磁珠混合**:-将切割出的凝胶片段转移到含有磁珠的溶液中,温和地混合以促进磁珠与核酸的结合。6.**磁分离**:-将含有磁珠和核酸的混合物置于磁分离架上,利用磁场使磁珠快速聚集在管底,从而实现与溶液的分离。7.**洗涤**:-移除未结合的溶液,向磁珠上加入洗涤液,再次进行磁分离以去除杂质。在基因编辑中,Pfu DNA Polymerase可以用于精确地引入特定位点的突变,或在基因组中插入特定的DNA序列。Reaction buffer and ATP-Mg
FnCas12a不仅可用于体外dsDNA的特异剪切,也可用于靶标核酸的快速检测,如HOLMES核酸快检技术。Recombinant Human IL-22R alpha 1 Protein,hFc Tag
pA-Tn5转座酶是通过将ProteinA与Tn5转座酶进行融合来构建的。ProteinA是一种来源于金黄色葡萄球菌的蛋白质,它具有高亲和力结合大多数哺乳动物IgG抗体的Fc片段的能力。Tn5转座酶是一种能够识别特定DNA序列并在基因组上进行“剪切-粘贴”或“复制-粘贴”的酶。融合ProteinA的目的是为了在实验中实现对特定蛋白质的靶向。下面是pA-Tn5转座酶融合的一般步骤:1.**基因克隆**:首先,将Tn5转座酶的基因和ProteinA的基因克隆到一个表达载体中。这通常涉及到分子克隆技术,如PCR扩增、限制性内切酶消化和连接酶连接。2.**融合蛋白设计**:设计一个融合蛋白,其中ProteinA的基因序列和Tn5转座酶的基因序列通过一个短的连接肽(LinkerPeptide)相连。这个连接肽通常包含几个氨基酸残基,以确保两个蛋白部分在融合后仍能保持各自的构象和功能。3.**表达载体构建**:将融合基因插入到适合的表达载体中,这个载体应该包含适当的启动子、标记基因(如抗性基因)和终止子,以确保融合蛋白在宿主细胞中得到高效表达。4.**宿主细胞表达**:将构建好的表达载体转化到宿主细胞(如大肠杆菌)中,通过诱导表达融合蛋白。Recombinant Human IL-22R alpha 1 Protein,hFc Tag
分泌型卷曲相关蛋白2(SFRP2)是Wnt通路的天然拮抗剂,亦能以非经典方式促进血管生成与胶原成熟,在心肌梗死修复、病基质重塑及干细胞微环境维持中扮演“双向调音师”。本品由HEK293真核分泌表达,完整覆盖信号肽至Netrin样结构域(aa 1-295),C端6×His标签经Ni-NTA与凝胶过滤两步纯化,SDS-PAGE呈单一条带,纯度≥98%;内素<0.03 EU/μg,可直接用于小鼠皮下或心肌注射。功能验证:SPR测定其与Wnt3a的抑制常数Ki=4.6 nM,100 ng/mL即可阻断β-catenin核转位;在HUVEC管腔形成实验中,50 ng/mL重组SFRP2将总管长提升2.1...