逆转录病毒载体可以将7.5Kb左右外源基因整合入靶细胞基因组，并稳定持久地表达，已经在批准的CAR-T产品和许多临床产品中得到应用。Shou个成功的基因药物临床试验是利用小鼠白血病病毒(Murin Leukemia Virus,MLV，gamma逆转录病毒)作为基因转移载体医治儿童的X性染色体连锁严重联合免疫缺陷（SCID-X1）。目前上市的6个细胞药物产品全部采用逆转录病毒（3个为gamma逆转录病毒载体，3个慢病毒载体）作为基因转移载体。逆转录病毒载体目前常用的主要有两个：gamma逆转录病毒载体(Retroviral vector,RV)和慢病毒载体(Lentivirus vector,LV)。两种病毒均属于逆转录病毒科，在自身携带的逆转录酶催化下将其正链RNA均逆转录为cDNA。病毒颗粒比较大，约为100nm（70-100nm，有的至200nm）,外层为表面突起的脂蛋白套膜，套膜内为20面体的衣壳（capsid）,核衣壳内由一螺旋结构的核酸。M-SAN HQ中盐核酸酶兼容常见细胞培养基，在多种培养基条件下去除核酸污染效率更高；浙江M-SAN中盐核酸酶70950-150
在生物工艺流程中，需要使用核酸酶去除终产品中的核酸污染，而核酸酶作为外源成份，也需要在生产流程中去除。核酸酶去除工艺包括热灭活法、酶抑制剂、离子交换和亲合层析法等。慢病毒LV的pI在6.0-6.5左右，包装了完整基因组DNA后的AAV病毒颗粒PI大致为5.9，来自于S.marcescens的全能核酸酶pI 6.85左右，M-SAN HQ中盐核酸酶pI 8.7左右。因此，在同样的条件下，从LV/AAV溶液中去除M-SAN HQ中盐核酸酶比去除Benzonase全能核酸酶更容易、更彻底。山东等渗条件中盐核酸酶70950-160中盐核酸酶的生产在符合ISO13485:2016体系基础上，增加了cGMP相应要求。
经典的慢病毒载体（LV）的生产工艺如下，——三质粒系统瞬时转染HEK293细胞系，转染24小时后LV由转染阳性细胞生产并排出到培养上清液中；收获上清培养液后，加入核酸酶去除HCD污染，通过澄清步骤去除大的细胞碎片等杂质；下游纯化步骤分离LV载体，纯化方法包括切向流过滤TFF、色谱纯化及超速离心；纯化后的LV病毒颗粒经过无菌过滤，更换到优化后的配方中，灌装并冷冻保存。每批Car-T生产时取对应量的LV病毒，切忌反复冻融，否则LV病毒会失活。
细胞基因药物的基因递送有病毒及非病毒两种方式，其中病毒递送更为常用。在病毒递送路径中，腺相关病毒（AAV）和慢病毒（Lentivirus）是常用的两种载体；差别是病毒基因组的存在形式，AAV的基因组一般不整合到染色体中，以游离形式存在于染色体之外，且一般会表达数年之久；而慢病毒的基因组则会整合到染色体达到长期持续表达的目的。此外，其它用于基因药物的病毒载体有单纯疱疹病毒（HSV）、痘苗病毒（Vaccina Virus）、痘病毒（Poxviruses）。M-SAN HQ中盐核酸酶在生理盐条件下具有更高活性，降解HCD效率更高，便于HCD的去除。
文章作者对酶法去除dsDNA进行了优化研究，两种酶浓度梯度为25U/ml、50U/ml及100U/ml，Mg2+浓度为5mM，通过PicoGreen检测dsDNA含量。结果发现，25U/ml的M-SAN HQ中盐核酸酶对dsDNA去除效果明显优于100U/ml的Benzonase。此外，在酶切反应速度方面，M-SAN HQ有更明显的优势，——在低浓度底物dsDNA（如20ng/ml）条件下，50U/ml的M-SAN HQ在5分钟内将dsDNA降解到2ng/ml左右；而50U/ml的Benzonase在30分钟孵育消化后，dsDNA浓度依然是12ng/ml左右。M-SAN HQ中盐核酸酶在生理盐浓度下具有较高活性，较适合盐浓度为125-250 mM。云南M-SAN HQ中盐核酸酶70950-202
ArcticZymes Technologies旨在是研究和开发具有独特特性的酶。浙江M-SAN中盐核酸酶70950-150
大规模生产阶段，AAV/LV载体生产流程跟抗体、疫苗类药物的生产类似，主要包含上游培养、下游纯化及制剂部分。上游培养分为质粒开发、细胞扩增、三质粒共转染及病毒载体生产等步骤。下游纯化分为细胞裂解释放AAV病毒颗粒（可以通过去污剂、机械作用、高渗或冻融操作等）or收获细胞上清液得到含LV病毒原液、加入核酸酶以减少宿主细胞核酸污染、澄清是通过离心或过滤等方法去除细胞碎片和杂质等、超滤浓缩以减少后续色谱纯化体系、亲合及离子交换等纯化得到高纯度病毒载体。制剂部分主要是超滤更换缓冲液、过滤除菌及制剂灌装等。浙江M-SAN中盐核酸酶70950-150
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