无锡基因编辑技术脱靶检测实验室

2022年2月下旬，在医麦客举办的年度盛会——“蓄力前行，助航新生——2021 CSGCT基因与细胞zhiliao医学峰会”期间，唯可生物创始人兼CEO-吴宁博士分享了唯可生物在基因zhiliao赛道针对安全性展开的技术服务，让在场行业大咖和观众真正领会到ISA(integration site analysis，整合位点插入分析)领域国际金标准技术的优势，以及基因编辑定量脱靶检测、载体拷贝数检测、载体质量控制等多项检测技术的行业意义。吴宁博士毕业于德国海德堡大学，德国国家aizheng研究中心(DKFZ)，并于2021年3月同几位合伙人联合创立了上海唯可生物科技有限公司。其创始团队拥有的检测技术包括源于DKFZ，Manfred Schmidt团队的LAM-PCR(linear amplification-mediated Polymerase Chain Reaction，线性扩增阳离子介导的聚合酶链反应)，LTA-PCR(Ligation-mediated target amplification Polymerase Chain Reaction，连接介导的目标扩增聚合酶链反应)和TES(Target enrichment sequencing，靶向富集测序)体系，并基于此形成的多项全球lingxian的基因zhiliao安全性检测技术。脱靶检测实验室，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。无锡基因编辑技术脱靶检测实验室

改进Cas变体使用SpCas9和SaCas9 变体：已研发出诸如SpCas9-Nickase、dCas9 、dCas9–FokI、xCas9、Cas9-NG、evoCas9、SpCas9 – HFI、eSpCas9和Hypa-Cas9等多种Cas变体，可降低脱靶效应。改进的Cas9同源物具有更广的PAM功能和特异性：实验表明Cpf1、CRISPR-Cpf1-RNP可降低脱靶效应。CRISPR 递送方法：基于病毒的递送方法：腺病毒 (AdV) 显示出整合到靶细胞基因组中的微弱潜力，这一特征有利于限制脱靶效应。然而，AdVs 会引发免疫反应，目前还不能完全排除它与宿主基因组整合的可能性。非病毒递送方法：当sgRNA和Cas9以RNP复合物形式传递时，电穿孔显示植物原生质体中的脱靶突变数量很低。通过脂质体介导的转染传递RNP复合物显示，与质粒DNA转染相比，脱靶突变的发生率较小。常州基因编辑技术脱靶检测评估基因疗法脱靶检测，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。

如何检测脱靶效应？在gRNA修饰中，截短的sgRNA是一种减少脱靶效应的简单方法，并且基于RNP的递送在大多数情况下适用于获得更高的目标活性。此外，选择合适的Cas变体对于减少脱靶效应也至关重要。但选择合适的脱靶检测工具，也是重中之重。脱靶预测结合PCR检测法，利用脱靶预测软件预测潜在的脱靶位点，PCR扩增预测的脱靶位点，利用直接测序或酶切法检测脱靶情况。操作简便、成本低偏倚性预测。全基因组测序，一种通过高通量测序检测脱靶突变的方法，需要选择适当的参考基因组过滤背景突变，数据比对分析获得含有PAM基序的潜在修饰位点，进一步基因扩增验证其突变情况。高通量全基因组范围检测可检测SNPs，Indels和染色体水平变化。

通常不需要进行标准的遗传毒性组合试验，但应根据基因zhiliao产品的特点、产品的具体适应症、载体的已有信息、导入基因序列结构等，评估基因zhiliao产品整合进基因组的可能性，判断是否需要开展另外的遗传毒性研究，如研究基因组修饰的发生情况，并检测随后可能发生的异常细胞行为；评估插入突变（插入位点、插入拷贝数等）引起的遗传毒性风险。当基因zhiliao产品采用基因编辑或转座子技术时，需要关注脱靶编辑、转座子转座印迹引起的遗传毒性问题；鉴定/表征基因组整合位点。crispr/cas9脱靶检测，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。

细胞外检测方法：细胞外检测方法较为直接，将基因组提纯后进行CRISPR体外切割实验，再捕获发生脱靶切割的位点即可。1) Digenome-seqDigenome-seq是较早提出的一类细胞外脱靶位点检测方法，提纯的基因组DNA被Cas9/sgRNA切割后，再经过标准的全基因组测序流程获得测序数据，之后需要较为复杂的生物信息学分析才能够获得CRISPR切割位点的信息。总体来讲，这种方法测序成本较高，并且检测灵敏度也有限。2)SITE-seq为了有效检测到低频脱靶位点，一般需要在建库时定向捕获CRISPR切割位点。SITE-seq就是这样一种测序方法，提纯的基因组DNA经过Cas9/sgRNA切割后，在切割位点末端连接带Biotin的接头；再随机打断基因组，在另一端连接第二个接头；经过链霉亲和素磁珠纯化，只有一轮被Cas9切割的DNA才能够被纯化并测序，实现了CRISPR切割位点的富集。该方法虽然提高了脱靶位点的检测灵敏度，但有着较高的实验要求，每次需要投入大量的基因组DNA，并且无法区分提纯基因组DNA时发生的随机断裂和Cas9的切割，导致产出较为明显的背景信号。同时，由于一轮Biotin接头只会接在Cas9切割位点的一侧，导致测序结果里只能看到脱靶位点一侧的序列。基因编辑可以‘指哪打哪’,四种脱靶检测方法。南通crispr/cas9脱靶检测政策

如何降低脱靶效应？选择特异的gRNA； 使用RNP； 使用eSpCas9的质粒； 使用Nickase Cas9。无锡基因编辑技术脱靶检测实验室

CIRCLE-seq和CHANGE-seq与SITE-seq同期发表的CIRCLE-seq一定程度上解决了SITE-seq的一些问题。CIRCLE-seq的第一步是将纯化后的基因组DNA随机打断成300bp左右的片段，然后首尾相连成环状DNA，这种方法很好地避免了DNA随机断裂造成的背景噪声。实验的第二步是用Cas9切割环状DNA，再连上接头并进行双端测序，这样就可以在一次测序中同时获取切割位点的两侧序列，弥补了SITE-seq的另一个缺点。CIRCLE-seq从总体上来说要优于SITE-seq，但是将基因组DNA随机打断后成环的效率并不高，所以同一作者在3年后发表了CHANGE-seq，用Tn5一步法打断基因组并加接头，提高了成环效率，降低了起始基因组DNA的用量。无锡基因编辑技术脱靶检测实验室