如今，实时荧光定量PCR(qPCR)是一种首 选的支原体检测方法，因为它准确、灵敏且省时。与常规PCR不同，qPCR允许实时观察支原体DNA的DNA扩增，因为特异性引物在荧光探针存在的情况下与其靶序列结合，从而导致DNA扩增和荧光增强。此外，qPCR比常规PCR更具特异性和敏感性。与标准PCR一样，支原体qPCR需要内部、阳性和阴性对照，并且可能受到实验室支原体DNA污染的影响。为什么我们需要敏感的支原体检测？细胞培养和细胞系的使用在生物研究和生物制药产品的生产中是必不可少的。当发生支原体感 染时，后果——感 染的疫苗、代价高昂的药物开发中断、不可靠的细胞培养试验、不可重复的结果、失去多年的工作、失去宝贵的细胞系——可能是毁灭性的。此外，支原体对细胞培养中常用的抗 生素不敏感。因此，必须每月以蕞灵敏和蕞可靠的方法对细胞系进行支原体的常规检测。传统的支原体检测方法。南京PCR法支原体检测方法学
日本药典JPXVⅢ〈G3-14-170〉对NAT法支原体检测产品有关性能验证的要求，包括检测限（LOD）、专属性、耐用性、可比性。其中对于耐用性的描述及要求如下：分析过程的耐用性是指方法参数有小的变动时，测定结果不受其影响的能力，同时为在正常使用中表明其可靠性。开发阶段就应评估耐用性。耐用性应显示方法参数有小的变动时分析过程的可靠性。对于核酸扩增法，方法参数小的变动就至关重要。(JPXVⅢ章节中列举了一些变化示例和需要检测的试验方案)合肥PCR法支原体检测常见问题qPCR法支原体检测试剂盒有哪些？
为什么要做支原体检测？支原体是蕞小和蕞简单的自我复制生命体。由于支原体体积小（100nm），缺乏刚性的细胞壁，因此肉眼无法检测到支原体，它们可以透过0.2μm的标准过滤膜，并对很多抗 生素都具有抵抗力。支原体污染是细胞培养中的一个主要问题，不止影响实验结果的有效性，更会影响细胞工程制药的质量和安全性。在细胞培养过程中，支原体感 染发生率达到63%，因而细胞培养过程中被支原体污染是一个世界性的难题。当细胞（特别是传代细胞）被支原体污染后，细胞内的DNA、RNA及蛋白表达发生改变，而细胞的生长率一般并未发生明显的影响，因而细胞被支原体污染一般难以察觉。
美国药典USP40〈1223〉对NAT法支原体检测产品有关性能验证的要求，包括专属性、检测限（LOD）、耐用性、重现性。其中对于定量限（LOD）的定义及验证方法如下：一种备用微生物方法的检测限(LOD)定义为在规定的实验条件下，在规定体积的样品中可以检测但不一定定量的微生物的蕞低数量。这应与在抗 菌效果试验、非无菌产品的微生物检验：微生物枚举试验、非无菌产品的微生物检验:特定微生物检验、支原体检验和无菌性检验中引用的质量控制生物进行，视替代方法而定。如何购买支原体检测试剂盒？
用qPCR法进行支原体检测时，出现扩增曲线复孔间荧光信号值降低及复孔间扩增曲线重复性差的原因可能是什么？复孔间部分曲线荧光信号值降低的现象比较常见，通常与反应管内存在气泡相关，随反应温度升高，气泡破裂导致荧光信号值降低。上机前需仔细检查反应管内是否有气泡残留。另外，针对加样误差引起的复孔间重复性差，实验人员上岗前需加强培训并考核，移液器务必定期校准并正确掌握使用方法。此外，还需注意确保试剂与样品混匀，离心后再上机。支原体检测和清理办法。泰州便捷支原体检测常见问题
培养细胞支原体检测。南京PCR法支原体检测方法学
常用的支原体检测方法有传统的分离培养法、指示细胞培养法（DNA染色法）、ELISA法、PCR法等。分离培养法基本不会出现假阴性结果，因此被誉为支原体检测金标准。不过也存在四个弊端，一是检测时间太长，支原体要长出明显克隆至少需要4周时间；二是尽管可以检测绝大多数支原体种类，分离培养法也有力所不及的时候，例如猪鼻支原体(M.hyorhinis)；三是易出现假阳性，因为在培养时需以阳性菌株为对照，易出现交叉污染；四是对实验室条件要求比较高。南京PCR法支原体检测方法学
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