外泌体(Exosome)是细胞主动分泌的囊泡样小体,大小均一,直径30-200nm,密度1.10-1.18g/ml,来源普遍,几乎所有细胞都可分泌,在血液,尿液,唾液,脑脊液,腹水,乳汁等体液中普遍分布。外泌体较早在1986年发现于培养的绵羊红细胞上清液中。1996年,研究者发现外泌体作为抗原呈递因子参与T细胞依赖的抗一些病症反应,开启了外泌体蛋白研究的新天地。2013年诺贝尔生物/医学奖解答了细胞如何组织其内部较重要的运输系统之一——囊泡传输系统的奥秘。超离法因操作简单,获得的囊泡数量较多而广受?欢迎,但过程比较费时,且回收率不稳定,纯度也受到质疑。用于外泌体提取的体液收集注意事项:选择血清还是血浆?推荐大多数研究选择血浆。深圳正规外泌体提取试剂厂家推荐

外泌体作为近几年来的研究热点,受到了科研工作者的青睐及追捧。由于外泌体内携带有大量的miRNA,少量lncRNA,Mrna以及DNA蛋白质成为液体活检的潜力无限的研究对相。所以,获得纯度高、内容物完整的外泌体非常之重要,那么,外泌体的提取方法也显得尤为重要。一、差速离心法差速离心法可以说是传统普遍的外泌体提取方法。原理是:首先低速离心以除去细胞和细胞凋亡碎片;随后,高速离心以去除大囊泡;高速离心以沉淀外泌体。苏州君欣生物科技有限公司重庆正规外泌体提取试剂生产厂家活细胞分泌到胞外的囊泡样小体,含有多种蛋白和核酸分子(DNA、RNA、以及miRNA)。

外泌体是一种存在于细胞外的多囊泡体,可通过细胞内吞泡膜向内凹陷形成多泡内涵体,内涵体与细胞膜融合后释放其中的小囊泡。外泌体的直径在40-110nm之间,其中包含RNA、蛋白质、microRNA、DN段等多种物质,存在于血液、唾液、尿液、脑脊液和母乳等多种体液中。外泌体从发现至今已有30多年的历史,虽然较初被认为可能是细胞的“垃圾”,所以才被排出来,但是近年来研究表明外泌体具有功能活性并可进行细胞间信息传递。如今,研究已经发现外泌体在抗原提呈细胞中呈递抗原程中、一些病症细胞发生的发展、神经细胞信号转导过程中都发挥着重要作用。
外泌体的提取、分离方法:免疫亲和层析法。免疫亲和层析法是利用生物体内存在的抗原、抗体之间高度特异性的亲和力进行分离的方法,主要用于生物大分子的分离、纯化。将其应用于外泌体的分离主要是借助外泌体表面的特异性抗体,如TSG101或四跨膜蛋白。此方法的原理是利用抗原抗体的特异性结合,只有囊泡表面有特异性的抗体才可以被识别,这使得提取的外泌体纯度高,但是产量低。Zarovni等分别用超速离心、密度梯度离心和免疫层析法,从血浆和细胞上清中提取外泌体蛋白,结果表明,免疫亲和层析法得到的外泌体表面存在多种标记蛋白(Alix、CD9、CD63),同时,ELISA和PCR结果也证明了该方法的可行性。重复离心操作还有可能对囊泡造成损害,从而降低其质量。

外泌体的提取方法学规范、统一定量及鉴定等。关于外泌体的提取有超速离心、试剂盒、超滤法、蔗糖密度梯度离心等,然而各种方法均有其利弊。超速离心法是目前外泌体相关文章中的主流方法,由于离心步骤繁琐,费事费力,而且步骤多导致实验中容易污染,且损耗量大,使得较终回收的外泌体不稳定。而且对于抽提细胞上清来说,更是极为不请便,试想用提取300ml的上清需要6个50ml离心管,无论是过滤还是后续的每一步的离心去沉淀,都具有操作极其不便的缺点,总之非常麻烦。而超滤法存在外泌体会堵塞膜孔,造成浓缩效率低,浓缩管重复利用差,甚至堵塞在膜孔的外泌体还可能会粘连成团,造成损失及较后的数据有误差,对于后续实验也有影响。外泌体目前被视为特异性分泌的膜泡,参与细胞间通讯。贵阳正规外泌体提取试剂平均价格
外泌体提取:超离法是较常用的外泌体纯化手段,采用低速离心、高速离心交替进行。深圳正规外泌体提取试剂厂家推荐
外泌体与肺病预后:外泌体mirRNA和蛋白质被认为是NSCLC的预后因子。Dejima等在研究NSCLC患者预后的生物标志物时发现,外泌体miR-4257和miR-21的含量显着上升。此外,还有研究表明,低水平miR-146a-5p的NSCLC患者较高水平miR-146a-5p的NSCLC患者有更高的复发率。Sandfeld-Paulsen等在研究276例NSCLC患者血浆的外泌体时发现,NY-ESO-1是其中对低生存率有显着影响的标志物。Silva等利用TaqMan低密度芯片的方法系统分析了28位NSCLC患者体内的365种miRNA,其中let-7f、miR-30e-3p和miR-20b表达均下调,进一步研究发现,let-7f和miR-30e-3p水平可以区分早期和晚期NSCLC患者,高水平let-7f和miR-30e-3p与不良预后密切相关。深圳正规外泌体提取试剂厂家推荐
将浓缩液加至20mmol/LTris/30%蔗糖/45%蔗糖(pH7.4)的密度梯度液上行4℃超速离心100000×g(水平转子SW-41)8h,吸取位于蔗糖之上的颜色明显较深条带的液体约5mL,以10倍PBS稀释混匀后再次用100-ku超滤离心管(Millipore)浓缩至5mL,将浓缩液重新以10倍PBS稀释后4℃超速离心100000×g(角转子TYPE50.2)4h,收集离心管底部约1mL液体及极微量沉淀(来自2×107个细胞)以20mLPBS重悬即为胞外体,用0.22μm过滤膜除菌后冻存于-80℃备用。(该步骤参考文献“肿瘤细胞来源胞外体的分离鉴定与功能检测”)优点是:分离得到的外泌体...