DAPI是一种能够与DNA强力结合的荧光染料,常用荧光显微镜观测,可以透过完整的细胞膜,可用于活细胞和固定细胞的染色,其工作浓度一般为0.3mmol/L或0.1ug/ml。显微镜下可以看到蓝色荧光的细胞,荧光显微镜观察细胞标记的效率高 ,且对活细胞无毒副作用。DAPI染色常用于细胞凋亡检测,染色后用荧光显微镜观察或流式细胞仪检测。DAPI也常用于普通的细胞核染色以及某些特定情况下的双链DNA染色。DAPI的大激发波长为340nm,大发射波长为488nm, DAPI和双链DNA结合后,大激发波长为360nm,大发射波长为460nm。检测试剂盒要留心避免出现严峻溶血。结晶紫水溶液(0.5%)
杀灭曲线的建立：通过建立杀灭曲线（剂量反应曲线），确定能够杀死未转染宿主细胞的较低浓度，从而筛选得到稳定表达目的蛋白的细胞株。建立杀灭曲线至少选择5个浓度。1、按照20-25%的细胞密度将未转化的细胞铺在合适的培养板上，37℃，CO2过夜培养（需要更高密度，可增加接种量）。2、根据细胞类型，设定合适的浓度梯度。以哺乳动物细胞为例，可设定50，100，250，500，750，1000μg/mL。3、第2天换用新鲜配制的含有相应浓度药物的培养基，每个浓度做三个平行孔。4、接下来每3-4天更换新的含药物培养基。5、按照每2天进行活细胞计数，来确定杀灭未转染细胞的恰当浓度。通常7-10天内能够杀死绝大多数细胞的较低浓度为筛选用的工作浓度。平衡盐溶液(10×BSS)液体培养基接种向肉膏蛋白胨液体培养基中接种少量菌体时，其操作步骤基本与斜面接种时相同。
缓冲溶液的配制和应用：为了配制一定pH的缓冲溶液，首先选定一个弱酸，它的pKaφ尽可能接近所需配制的缓冲溶液的pH值，然后计算酸与碱的浓度比，根据此浓度比便可配制所需缓冲溶液。以上主要以弱酸及其盐组成的缓冲溶液为例说明它的作用原理、pH计算和配制方法。对于弱碱及其盐组成的缓冲溶液可采用相同的方法。缓冲溶液在物质分离和成分分析等方面应用普遍，如鉴定Mg2 离子时，可用下面的反应：白色磷酸铵镁沉淀溶于酸，故反应需在碱性溶液中进行，但碱性太强，可能生成白色Mg（OH）2沉淀，所以反应的pH值需控制在一定范围内，因此利用NH3·H2O和NH4Cl组成的缓冲溶液，保持溶液的pH值条件下，进行上述反应。
标准物质的正确使用:溯源性。溯源性是通过一条具有规定不确定度的不间断的比较链，使测量结果能够与规定的参考标准，通常是国家计量标准或国际计量标准联系起来的特性。食品质量分析中，很多分析结果是靠标准物质来溯源的，实验室在选购标准物质时应注意其证书是否能够证明其对国家计量标准的溯源性。有些标准物质由于与待测样品的物理化学特性不同，如块状与粒状、固体与液体、基体不完全匹配等，虽然溯源性能够达到要求，但分析结果的溯源性会受到影响。检测试剂盒是固相夹心法酶联免疫吸附实验(ELISA)。
检测试剂盒运用注意事项:在加入底物液A液和底物液B液后，一般显色时间为15～20min即可。若颜色较浅，可延长反响时间到30min。反之，则减短反响时间。反响停止液为2M硫酸，防止接触皮肤。不要运用过了有用日期的检测试剂盒；也不要运用过了有用期的试剂盒中的任何试剂，掺杂运用过了有用期的检测试剂盒会引起灵敏度的降低；不要交流运用不同批号试剂盒中的试剂。试剂盒具有的几个优点：吸附性能好，空白值低，孔底透明度高的固相载体；稳定的重复性和可靠性；灵敏、特异的抗体。配制ph计的3mol/L的KCL溶液 ph计的ph电极在使用前都是被护套里的保护液保护着。组织固定液(中性，10%)
检测试剂盒采用双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验。结晶紫水溶液(0.5%)
检测试剂盒检测成果分析办法:如果呈现规范曲线的线性欠好，或平行性欠好(双孔对照孔的OD值不同很大)，或呈现跳孔的现象，可能引起的原因有酶标板孔间彼此污染、洗板后未能尽快进行下一步操作、添加样品或其它试剂时操作的办法不对、孵育位置避光性不佳或盖板膜没有密封好使得水分蒸腾、酶标板孔问参加的试剂量不同，相对应的解决办法是加样时请当心勿将液体溅人另一孔中，人工洗板时也请当心，勿将洗涤液溅人另一微孔中、在洗板后及时进行下一步操作、添加试剂时请悬空滴入，牢记勿将头接触到板孔内，吸取不同试剂瓶中的液体时就要替换一次头、确认孵育环境不透光，盖板膜将酶标板密封好、运用已校正过的微量加样器，如将次参加液体时头上留有一滴的液体滴下，那么将今后头上留有的液体也滴下，以保证参加液体体积的一致性。结晶紫水溶液(0.5%)
