酶的校正：要满足在同一方法学、同一测定条件、与理论计算的FACTOR值差异不大，没有发现有明显影响因素，方可 进行校正。检验结果溯源性，得建立一个可靠的参考系统作为准确性基础，然后将准确性转移到常规方法测定中去，使常规方法测定结果可溯源到参考系统所提供的准确性基础上来。在实现溯源性目标过程中，永远以患者新鲜标本为实验对象，以方法学对比试验方法为验证手段。方法学对比试验常采用回归方程进行统计分析，假如斜率接近1，截距较小，这意味着实验室常规方法对标本测定结果和溯源目标参考系统对标本检测结果非常接近。检测试剂盒吸入液体时的的方法是吸两档打一档。果胶酶检测试剂盒(DNS微板法)
具体的检测试剂盒规矩说明操作方法：汲取液体时要选用量程和需求量接近的微量加样器吸，减少差错。液体悉数参加酶标孔后，将酶标板放在桌子上平行悄悄摇晃30s，检测试剂盒使液体充沛混合均匀，也使其得到充沛的反应。孵育时要使盖板膜封好酶标板，避免水分蒸腾，以防曲线不成线性。试验前的30min将试剂盒中的所有试剂从冰箱取出，使试剂盒中的所有试剂与提取好的样品溶液的温度相同，酶标板只要取出所需量。因为底物显色剂对光及其敏感，因此要避光保存。手工洗板时每次参加洗涤液后。应静置15～30s，不要将一个酶标孑L中的洗涤液溅入另一酶标孔中，避免交叉污染。甩去洗涤液后将酶标板放在毛巾或吸水纸上拍干。台氏液(Tyrode's Solution)氨苄青霉素溶液配置：0.22μm滤膜过滤除菌，小份分装（1ml/管）后，置于－20℃保存。
淋巴细胞分离液：淋巴细胞分离液是一种根据细胞密度差异，借助离心产生的重力加速度，进行细胞的分离纯化的常用试剂。常用的淋巴细胞分离液有Ficoll淋巴细胞分离液、Percoll淋巴细胞分离液。Ficoll与Percoll分离单个核细胞的方法均为密度梯度离心法。分离原理：外周血中单个核细胞和单核细胞,其体积、形态和密度与其他细胞不同，淋巴细胞分离液是一种密度介于1.075~1.090之间而近似于等渗的溶液,用它做密度梯度离心,使一定密度的细胞按相应密度梯度分布，从而将各种血细胞加以分离。淋巴细胞分离液Lymphocyte Separation Medium（human, Ficoll-Paque ）是世界范围内用于体外研究分离人淋巴细胞的实验室公认的标准。
检测试剂盒以免疫学反应为根底，将抗原、抗体的特异性反应与酶对底物的催化效果相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。因为抗原、抗体的反应在一种固相载体-聚苯乙烯微量滴定板的孔中进行，每参与一种试剂孵育后，可通过洗刷除掉剩余的游离反应物，然后保证试验结果的特异性与稳定性。使用双抗体夹心法测定标本水平。用纯化的抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次参与，再与HRP符号的抗体结合，构成抗体-抗原-酶标抗体复合物，通过完全洗刷后加底物TMB显色。检测试剂盒TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色，并在酸的效果下转化成终的黄色。颜色的深浅和样品呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值)，通过规范曲线核算样品的浓度。校准液标示值往往是按其基质偏差修正的，所以标示值并非实际值。
试剂盒操作注意事项：使用前，先检查机器所有紧固件是否拧紧，皮带是否张紧。 主轴运转方向必须符合防护罩上所示箭头方向，否则将损坏机器，并可能造成人身伤害。 检查电器是否完整。检查机器粉碎室内有无金属等硬性杂物，否则会打坏，影响机器运转。物料在粉碎前一定要检查纯度，不允许有金属硬杂物混入，以免打坏引起燃烧等事故。机器上的油杯应经常注入润滑油，保证机器正常运转。停机前停止加料，如不继续使用，要清理机内物。定期检查同筛网是否损坏，如有损坏，应立即更换。 科研实验中试剂取用应注意事项：视线与量筒内液体的凹液面的低处保持水平。乳酸脱氢酶染色液(M型,四唑盐法)
利福平溶液怎么配制：过滤灭菌后，小份分装（1-2ml每管）后，置于－20℃保存。果胶酶检测试剂盒(DNS微板法)
检测试剂盒实验经验分析：洗板时，每次洗液加入后，应静置1分钟，使清洗更加彻底。没有洗板机时，倒去液体后，要将酶标板在报纸或毛纸上用力拍干（报纸就免了吧！）。洗液不够时，可用蒸馏水自行配制PH7.4，0.02M的磷酸缓冲液，加入0.1%的吐温20作为洗液。加入1/1000的叠氮钠后可长期保存（洗液先用现配不费多少事的）。底物是光敏感的，要在临用前现配（同前，避光！）。检测前，要打开酶标仪，使之稳定10分钟以上。底物有一定的毒性，终止液对皮肤有腐蚀性，应尽量避免接触（终止液为硫酸，小心毁容）。待检样品要澄清，否则会影响结果。温浴时间应遵守检测试剂盒规定。应尽量做双孔实验，这样才能保证数据的准确性。果胶酶检测试剂盒(DNS微板法)
