如何降低检测试剂盒实验的误差概率？检验技师。应具备从事实验室操作的基本素质和实践经验。能熟练操作实验仪器、器械，具有一定总结和分析问题的能力，对实验中出现的意外情况能及时妥善解决。使用校对过的微量移液器，排除自然误差。移液器准确与否对定量检测尤为重要。仔细阅读说明书。严格按照说明书要求进行规范化操作。检测试剂盒不同批号的试剂不可混用。值得改进的地方，反复试验确定成立后才能改进。洗涤干净。洗板不干净，酶结合物本底显色会呈现假阳性。洗涤液要新鲜，现用现配，陈旧的洗涤液会出现本底增高现象，也可能出现假阳性。检测试剂盒有稳定的重复性和可靠性。CPD抗凝剂
稳定转染细胞的筛选：1、转染48 h后，用含适当浓度的潮霉素B筛选培养基来传代细胞（直接传代或者稀释后传代）。注意：细胞处于活跃分裂状态时的杀伤效果较好。但细胞过于稠密，其效率会降低，较好将细胞稀释至丰度低于25%。2、每隔3-4天更换含有药物的筛选培养液。3、筛选7天后观察并评估细胞克隆（集落）的形成情况。集落的形成可能还需要一周或者更多的时间（取决于宿主细胞类型，转染，以及筛选效果）。4、挑取并转移5-10个抗性克隆于35mm细胞培养板，继续用含药物的筛选培养液维持培养7天。5、后续更换正常培养基培养即可。醋酸钠林格氏液(无菌)科研实验中试剂取用应注意事项：用过的试管要立即用清水冲洗干净。
液体培养基接种向肉膏蛋白胨液体培养基中接种少量菌体时，其操作步骤基本与斜面接种时相同，不同之处是挑取菌体的接种环放入液体培养基后，应在液体表面处的管内壁上轻轻磨擦，使菌体从环上脱落，混进液体培养基，塞好试管塞后，摇动液体，使菌体在液体中分布均匀，或用试管振荡器混匀。向液体培养基中接种量大或要求定量接种时，可将无菌水或液体培养基注入菌种试管，用接种环将菌苔刮下，再将菌种悬液以无菌吸管定量吸出加入，或直接倒入液体培养基。如果菌种为液体培养物，则可用无菌吸管定量吸出加入或直接倒入液体培养基。整个接种过程都要求无菌操作。
培养方法：1.体外分离获得瘤浸润淋巴细胞（tumor infiltrating lymphocytes, TIL）。2.活化阶段：用培养液调节成1*106/ml接种于孔板中，加入IL-2（1000U/ml），在37℃，5%CO2条件下培养。注：一般培养的初期（7天左右）细胞无明显生长，为生长克制期。由于瘤本身固有的生物学特性、瘤抗原性及淋巴细胞浸润程度等，体外增殖前期会受到不同程度的克制；前期需尽快去除瘤细胞，如重量沉降法及贴壁去除法等，需具体情况具体分析。（前期处理有学者采用PHA、胰岛素、胰素等不同方法刺激）3.增殖阶段：细胞增殖到107后，用CD3单抗（30ng/mL）、CD28（30ng/mL），加入经180Gy辐射的健康供者PBMC（1*108）的培养瓶中，刺激第二天，加入IL-（4000U/ml）快速扩增。丁胺卡那霉素给药说明：患者应给予足够的水分，以减少肾小管损害。
液体固体试剂正确取用试剂的方法过程：固体试剂一般装在带胶木塞的广口瓶中，液体试剂则盛在细口瓶中（或滴瓶中），见光易分解的试剂（如硝酸银）应装在棕色瓶中，每一种试剂都贴有标签以表明试剂的名称、浓度、纯度。（实验室分装时，固体只标明试剂名称，液体还须注名明浓度）。固体粉末试剂可用洁净的牛角勺取用。要取一定量的固体时，可把固体放在纸上或表面皿上在台秤上称量。要准确称量时，则用称量瓶在天平上进行称量。液体试剂常用量筒量取，量筒的容量为：5mL、10mL、50mL、500mL等数种，使用时要把量取的液体注入量筒中，使视线与量筒内液体凹面的低处保持水平，然后读出量筒上的刻度，即得液体的体积。科研实验中试剂取用应注意事项：读数时量筒必须放平稳。脂褐素染色液(醛品红法)
磷酸缓冲盐溶液可以破坏生物蛋白的结构及生物特性。CPD抗凝剂
如何判断是否是基质效应呢？第一种方法是采用线性稀释，一般来讲，抗原和捕获抗体、检测抗体之间的结合作用很强，样品浓度被稀释并不影响它们的结合，而造成基质效应的非特异结合的力要弱很多，如果不断稀释样品，非特异结合造成的干扰会逐步减少，测量值也更接近真实值。没有基质效应时，无论如何稀释，测量值都和真实值吻合。而有基质效应时，稀释会造成非特异性结合比例的减少，测量值也相应地产生很大改变。第二种方法是掺入回收率实验，将低、中和高浓度的分析物掺入到已测定过浓度的样本中，掺入前后实测到的浓度增加部分与掺入浓度之比就是回收率，回收率以百分比的形式呈现。回收率介于80-120%，才符合标准。CPD抗凝剂
