cns，pirb的功能和下游抑制性信号通路仍然未被阐明，因此迫切需要pirb的细胞和动物模型。目前对于pirb基因功能的研究，多采用可溶性的pirb的胞外段(pirbextracellularpeptide，pep)和抑制剂，或者采用慢病毒转染。前者受到是否能够透过血脑屏障和抑制剂效率的影响，后者慢病毒转染在原代细胞和在体的转染效率比较低，使研究pirb的功能受到极大的限制。为解决这些问题，我们通过crispr/cas9技术建立了pirb基因敲入小鼠，将pirb基因敲入c57bl/6j的rosa26位点，为研究pirb在免疫系统或者神经系统的作用和机制提供了很好的工具。技术实现要素：本发明的目的在于提供pirb基因敲入的小鼠动物模型。上海东寰提供动物模型构建过程中的原始实验记录及数据图片。浦东新区哪家公司提供疾病动物模型建模
空白组卵巢内细胞形态完整，可见各级卵泡生长活跃，并大多数为原始卵泡，卵泡颗粒层较多，黄体发育好。4mg、6mg组(***、八天给药)有炎性细胞浸润，各级卵泡减少，闭锁卵泡增加。2mg组(连续给药7天)可见很少次各级卵泡，及成熟卵泡，大多数为闭锁卵泡，卵泡颗粒层变薄，黄体明显减少。结论：使用％氯化钠溶液及10mg的医用顺铂(齐鲁制药)配制成2mg/kg顺铂注射液，按照10ml/kg连续腹腔注射7天，造模效果比较好。根据实验结果得出：本发明可对比不同剂量顺铂、不同给药时间的卵巢早衰造模方法，从而有效的确定大鼠卵巢模型建立方案。给本领域技术人员提供上述实施例，以完全公开和描述如何实施和使用所主张的实施方案，而不是用于限制本文公开的范围。对于本领域技术人员而言显而易见的修饰将在所附权利要求的范围内。扬州裸鼠疾病动物模型建模查阅已有的相关小鼠模型综述文献。
即为本发明构建的一种pirb基因敲入的小鼠动物模型。本发明所采用第二种技术方案的特点还在于，步骤1中得到grna1和grna2后分别与trancrrna在25℃孵育10min形成二级结构。步骤3中grna1、grna2的浓度均为2～10pmol/ul，cas9蛋白的注射浓度为30～100ng/μl。步骤4中southern杂交采用bamhi和avrii核酸内切酶切割f1代杂合子小鼠的dna。本发明的有益效果是：本发明提供了pirb基因敲入的小鼠动物模型及其构建方法，本发明的小鼠动物模型对于pirb基因功能的研究和在体验证提供了良好的基础。分离自pirb基因敲入小鼠的细胞还可以用于研究pirb发挥调节作用的下游机制。通过pirb敲入动物模型与不同类型cre小鼠的杂交，可以用于研究ad不同***或不同细胞类型pirb的调节作用。附图说明图1为本发明pirb基因敲入的小鼠插入pirb基因cds和loxp位点的打靶质粒载体的构建图；图2为本发明pirb基因敲入的小鼠模型的构建方法的流程图；图3为本发明f1代pirb敲入的小鼠的基因型pcr结果鉴定电泳图；图4为本发明f1代pirb敲入的小鼠验证pirb基因敲入效果的测序峰图；图5为本发明f1代pirb基因敲入的小鼠进行southern鉴定的方法示意图；图6为本发明f1代pirb基因敲入的小鼠进行southern鉴定的结果图。
配制成2mg/kg顺铂注射液，按照10ml/kg连续腹腔注射7天。实施例2：建立大鼠卵巢早衰模型步骤如下：将％氯化钠溶液(齐鲁制药，批号：aa1a8029a)中，配制成3mg/kg顺铂注射液,按照10ml/kg连续腹腔注射7天。实施例3建立大鼠卵巢早衰模型步骤如下：将％氯化钠溶液25ml加入规格为10mg的医用顺铂(齐鲁制药，批号：aa1a8029a)中，配制成4mg/kg顺铂注射液,按照10ml/kg分别在***天及第八天腹腔注射。实施例4：建立大鼠卵巢早衰模型步骤如下：将％氯化钠溶液(齐鲁制药，批号：aa1a8029a)中。上海东寰为您提供完善的小鼠动物疾病模型。
另外pirb在髓细胞和b细胞的表达随细胞分化增加。在免疫系统，pirb作为主要组织相容性复合物1(classimajorhistocompatibilitycomplex，mhc1)的受体，参与免疫调节，包括中性粒细胞和巨噬细胞整合素通路、细胞毒性t淋巴细胞、b淋巴细胞和体液—细胞免疫应答等。pirb的前两个细胞外免疫球蛋白结构域(d1-d2)介导mhci和pirb的结合。在系统(centralnervoussystem，cns)，pirb在许多脑区包括皮层、海马、小脑和嗅球都有表达，但在成年脊髓不表达。在细胞层面，pirb不仅表达于神经元，也表达于星形胶质细胞。在许多病理条件下，如脑外伤、中风和cns，pirb的mrna和蛋白表达水平增加。很多自发性动物模型在研究人类疾病时具有重要的价值。长宁区疾病动物模型建模原理
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