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疾病动物模型建模基本参数
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疾病动物模型建模企业商机

2mg组、4mg组、6mg组lh水平均上升,同样,只有2mg组有明显升高(p<),如图3所示。表3表4②体重变化:(mean±sd),如图4所示:2mg组(连续注射7天)与空白组相比,大鼠体重***下降(p<,注射第2天开始)。3mg组(连续注射7天)与空白组相比,大鼠体重***下降(p<,注射第4天开始),直至第12天*存活1只大鼠。4mg、6mg组(第1、8天注射)与空白组相比,大鼠体重分别在***次及第二次注射后的有***下降(p<),4mg组体重在停止给药后4天与空白组无差异。③卵巢重量:如表5、图5所示,2mg、6mg组大鼠在经过顺铂注射后卵巢重量相比对照组,都有不同程度缩减,其中2mg组卵巢重量明显减轻(p<),4mg、6mg组无明显差异。表5④动情周期观察(阴道涂片):3mg组动物死亡时间早,无完整的动情周期。如表、图6所示。正常大鼠动情周期4-5天。分为四个阶段,动情前期:撇圆形有核上皮细胞占绝大多数,白细胞和角化上皮细胞很少(图a)。动情期:角化上皮细胞占多大多数,由散在增至集白细胞和有核上皮细胞很少(图b)。动情后期:片状角化上皮细胞,有核上皮细胞和白细胞3种都有,无太大差异(图c)。动情间期:白细胞占绝大多数,有核上皮细胞和角化上皮细胞很少(图d)。能够准确模拟人相关特定功能与疾病特征。金山区小鼠疾病动物模型建模

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麻醉小鼠,仰卧固定于实验台上,颈部去毛后酒精消毒,切开皮肤,逐层暴露气管,将1mL注射器经两气管软骨环间隙朝向心端刺入气管,回抽无阻力,则注入博莱霉素5mg/kg/L(对照组注入等量的生理盐水)。手术完毕后迅速将动物直立、旋转,使药液在肺内分布均匀,动物清醒后常规饲养。4.2模型鉴定及后续检测:肺纤维化模型发展时间:给药后第7天肺组织大多呈重度肺泡炎改变,肺泡腔及肺间质内有大量中性粒细胞浸润,部分肺泡腔破坏或消失,肺间隔内成纤维细胞和增生,与正常肺组织对比差别明显;给药后第14天,肺纤维化开始形成。巨噬细胞、中性粒细胞等炎性细胞明显减少,成纤维细胞增多,肺泡间隔明显增厚,有胶原沉积。给药后第28天,多数小鼠发生弥漫性肺间质纤维化,肺间质被胶原纤维和成纤维细胞替代,肺泡壁破坏,肺大泡形成,但仍可见炎性细胞浸润。闵行区阿尔兹海默症疾病动物模型建模疾病动物模型建模公司哪家好?

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特发性肺纤维化模型小鼠(右)相对于对照组小鼠肺部组织MASSON染色对比(4周)5.急性肺损伤模型急性肺损伤(acutelunginjury,ALI)是各种直接和间接致伤因素导致的肺泡上皮细胞及内皮细胞损伤,造成弥漫性肺间质及肺泡水肿,导致的急性低氧性呼吸功能不全。以肺容积减少、肺顺应性降低、通气/血流比例失调为病理生理特征,临床上表现为进行性低氧血症和呼吸窘迫,肺部影像学上表现为非均一性的渗出变,其发展至严重阶段(氧合指数<200)被称为急性呼吸窘迫综合征(acuterespiratorydistresssyndrome,ARDS)。5.1急性肺损伤大鼠模型建立

该模型能够帮助我们研究pirb基因在免疫系统和神经系统的功能以及下游的调节机制。本发明的另一目的在于提供上述小鼠动物模型的构建方法。本发明所采用的第一种技术方案是:pirb基因敲入的小鼠动物模型,包括确定pirb基因的待敲入的特异性靶位点grna1和grna2,将pirb基因敲入c57bl/6j小鼠的rosa26基因的内含子1内,所述grna1的基因序列如seqid**所示,grna2的基因序列如。本发明所采用的第二种技术方案为:pirb基因敲入的小鼠动物模型的构建方法,具体按照以下步骤实施:步骤1、基于crispr/cas9技术构建针对c57bl/6j小鼠rosa26基因的特异性grna1和grna2,grna1的基因序列如seqid**所示,grna2的基因序列如;步骤2、构建“cagpromoter-loxp-stop-loxp-kozak-mousepirbcds-polya”基因盒打靶载体,将打靶载体进行线性化处理;步骤3、步骤2中将含有loxp位点打靶载体、步骤1中有活性的grna1和grna2与cas9蛋白共同注射进入**小鼠受精卵中,获得f0代小鼠;步骤4、将步骤3中性成熟的阳性f0小鼠分别与野生型鼠交配繁一代,获得f1代杂合子小鼠,通过pcr、测序和southern杂交确定动物基因型;步骤5、将步骤4获得的f1代杂合子小鼠近交获得f2代纯合子小鼠。明确研究疾病的独特资源确定小鼠疾病模型的初步选择。

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r3):5’-atactccgaggcggatcacaa-3’步骤4、鉴定为pirb基因敲入的f0代雄性小鼠7周龄、雌性小鼠6周龄分别与野生型异性小鼠交配获得f1代杂合子小鼠,图2为本发明f1代杂合子小鼠pirb基因敲除小鼠的流程图,小鼠出生后20天进行pcr鉴定,若有阳性小鼠出生,则表示转基因已经整合到生殖细胞。(1)通过pcr方法对获得的f1代小鼠进行基因型的鉴定:(a)dna的提取:方法1:采用takaraminibestuniversalgenomicdnaextractionkit()来获得高纯度的基因组dna。步骤a.每只小鼠剪下一段尾巴(2~5mm),放入离心管中,加入180μlbuffergl,20μl蛋白激酶k和10μlrnasea。步骤b.将步骤a离心管内于56℃孵育过夜。步骤c.过夜后12000rpm离心2min去除杂质。步骤d.加入200μlbuffergb和200μl无水乙醇,充分混匀。步骤e.将吸附柱放在收集管上,将步骤d得到的样品加到吸附柱里,12000rpm离心2min,弃掉收集管中液体。步骤f.弃去液体后在吸附柱中加入500μlbufferwa,12000rpm离心1min,弃掉收集管中液体。步骤g.在收集管中加入700μlbufferwb,12000rpm离心1min。弃掉收集管中液体。注意:bufferwb需要与100%乙醇预混,沿管壁加入bufferwb冲走残余的盐。步骤h.重复步骤g一次。小鼠是人类疾病理想的动物模型不仅因为小鼠在生理上与人类极为相似而且小鼠的遗传资源非常丰富。普陀区面瘫疾病动物模型建模

上海东寰提供动物模型构建过程中的原始实验记录及数据图片。金山区小鼠疾病动物模型建模

动物模型名称:皮肤浅II°及深II°烫伤大鼠模型2、实验动物种属:SD大鼠3、实验动物性别:雌雄不限4、实验动物年龄:成年5、实验动物体重:160-200g6、实验动物环境:SPF级1、实验方法:热力致皮肤损伤法。麻醉大鼠,根据体重腹部备皮,然后固定于实验台上。将大鼠移近加热纯净水的烧杯,将纱布条浸入热水中,待水温恒定于99℃时,取出纱布,立即平铺于待烫部位,于纱布接触大鼠皮肤后开始计时。致伤3s为浅II°烫伤,致伤10s为深II°烫伤。2、检测标准:a.皮肤大体观察:致伤3s大鼠局部皮肤发红、轻微水肿。愈合后毛发生长良好,有少量红褐**素沉着,皮肤轻微挛缩,表皮光滑;致伤10s大鼠局部皮肤发白、水肿。愈合后毛发生长良好,皮肤瘢痕形成,表面粗糙不平。b.皮肤组织病理学观察:致伤3s大鼠表皮层次尚清楚,细胞明显肿胀、变性,层次结构尚清楚,细胞核结构不清;致伤10s大鼠表皮细胞部分脱落,结构不清,明显变性、坏死,部分细胞已溶解金山区小鼠疾病动物模型建模

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